Abstract DNA double-strand break (DSB) repair is mediated by multiple pathways, including classical non-homologous end-joining pathway (NHEJ) and several homology-driven repair pathways. This is particularly important for Cas9-mediated genome editing, where the outcome critically depends on the pathway that repairs the break. It is thought that the local chromatin context affects the pathway choice, but the underlying principles are poorly understood. Using a newly developed multiplexed reporter assay in combination with Cas9 cutting, we systematically measured the relative activities of three DSB repair pathways as function of chromatin context in >1,000 genomic locations. This revealed that NHEJ is broadly biased towards euchromatin, while microhomology-mediated end-joining (MMEJ) is more efficient in specific heterochromatin contexts. In H3K27me3-marked heterochromatin, inhibition of the H3K27 methyltransferase EZH2 shifts the balance towards NHEJ. Single-strand templated repair (SSTR), often used for precise CRISPR editing, competes with MMEJ, and this competition is weakly associated with chromatin context. These results provide insight into the impact of chromatin on DSB repair pathway balance, and guidance for the design of Cas9-mediated genome editing experiments.

ABSTRACT DNA double-strand breaks are repaired by multiple pathways, including non-homologous end-joining (NHEJ) and microhomology-mediated end-joining (MMEJ). The balance of these pathways is dependent on the local chromatin context, but the underlying mechanisms are poorly understood. By combining knockout screening with a dual MMEJ:NHEJ reporter inserted in 19 different chromatin environments, we identified dozens of DNA repair proteins that modulate pathway balance dependent on the local chromatin state. Proteins that favor NHEJ mostly synergize with euchromatin, while proteins that favor MMEJ generally synergize with distinct types of heterochromatin. BRCA2 is an example of the former, which is corroborated by chromatin-dependent shifts in mutation patterns of BRCA2 -/- cancer genomes. These results uncover a complex network of proteins that regulate MMEJ:NHEJ balance in a chromatin context-dependent manner. ONE SENTENCE SUMMARY A multiplexed screen reveals how dozens of proteins sense the local chromatin context to tune the balance between two DNA repair pathways.

Abstract Prime editing is a powerful genome editing technology, but its efficiency varies depending on the pegRNA design and target locus. Existing computational models for predicting prime editing rates are limited by their focus on specific edit types and by omitting the local chromatin environment. In our study, we developed machine learning models that predict prime editing efficiencies across a wide range of edit types up to 15 bp (’PRIDICT2.0’) and in different chromatin contexts (’ePRIDICT’). Both models can be accessed at www.pridict.it .

DNA double-strand breaks are repaired by multiple pathways, including non-homologous end-joining (NHEJ) and microhomology-mediated end-joining (MMEJ). The balance of these pathways is dependent on the local chromatin context, but the underlying mechanisms are poorly understood. By combining knockout screening with a dual MMEJ:NHEJ reporter inserted in 19 different chromatin environments, we identified dozens of DNA repair proteins that modulate pathway balance dependent on the local chromatin state. Proteins that favor NHEJ mostly synergize with euchromatin, while proteins that favor MMEJ generally synergize with distinct types of heterochromatin. Examples of the former are BRCA2 and POLL, and of the latter the FANC complex and ATM. Moreover, in a diversity of human cancer types, loss of several of these proteins alters the distribution of pathway-specific mutations between heterochromatin and euchromatin. Together, these results uncover a complex network of proteins that regulate MMEJ:NHEJ balance in a chromatin context-dependent manner.

ABSTRACT The efficiency and outcome of CRISPR/Cas9 editing depends on the chromatin state at the cut site. It has been shown that changing the chromatin state can influence both the efficiency and repair outcome, and epigenetic drugs have been used to improve Cas9 editing. However, because the target proteins of these drugs are not homogeneously distributed across the genome, the efficacy of these drugs may be expected to vary from locus to locus. Here, we systematically analyzed this chromatin context-dependency for 160 epigenetic drugs. We used a human cell line with 19 stably integrated reporters to induce a double-stranded break (DSB) in different chromatin environments. We then measure Cas9 editing efficiency and repair pathway usage by sequencing the mutational signatures. We identified 67 drugs that modulate Cas9 editing efficiency and/or repair outcome dependent on the local chromatin environment. For example, we find a subset of histone deacetylase inhibitors that improve Cas9 editing efficiency throughout all types of heterochromatin (e.g., PCI-24781), while others were only effective in H3K27me3-marked regions (e.g., Vorinostat). In summary, this study reveals that most epigenetic drugs alter CRISPR editing in a chromatin-dependent manner, and provides a detailed guide to improve Cas9 editing more selectively at the desired location. HIGHLIGHTS A screen identifies dozens of drugs that alter Cas9 editing in a chromatin context-dependent manner Many HDAC inhibitors boost Cas9 editing efficiency throughout all types of heterochromatin The DNMT inhibitor Decitabine completely blocks resection-dependent repair across the genome