Deep learning for protein interactions The use of deep learning has revolutionized the field of protein modeling. Humphreys et al . combined this approach with proteome-wide, coevolution-guided protein interaction identification to conduct a large-scale screen of protein-protein interactions in yeast (see the Perspective by Pereira and Schwede). The authors generated predicted interactions and accurate structures for complexes spanning key biological processes in Saccharomyces cerevisiae . The complexes include larger protein assemblies such as trimers, tetramers, and pentamers and provide insights into biological function. —VV

Abstract Protein-protein interactions play critical roles in biology, but despite decades of effort, the structures of many eukaryotic protein complexes are unknown, and there are likely many interactions that have not yet been identified. Here, we take advantage of recent advances in proteome-wide amino acid coevolution analysis and deep-learning-based structure modeling to systematically identify and build accurate models of core eukaryotic protein complexes, as represented within the Saccharomyces cerevisiae proteome. We use a combination of RoseTTAFold and AlphaFold to screen through paired multiple sequence alignments for 8.3 million pairs of S. cerevisiae proteins and build models for strongly predicted protein assemblies with two to five components. Comparison to existing interaction and structural data suggests that these predictions are likely to be quite accurate. We provide structure models spanning almost all key processes in Eukaryotic cells for 104 protein assemblies which have not been previously identified, and 608 which have not been structurally characterized. One-sentence summary We take advantage of recent advances in proteome-wide amino acid coevolution analysis and deep-learning-based structure modeling to systematically identify and build accurate models of core eukaryotic protein complexes.

Abstract The COPII coat mediates Endoplasmic Reticulum (ER) to Golgi trafficking for thousands of proteins. Five essential coat proteins assemble at the ER into a characteristic two-layer architecture, which recruits cargo proteins whilst sculpting membrane carriers with diverse morphologies. How coat architecture drives membrane curvature whilst ensuring morphological plasticity is largely unknown, yet is central to understanding mechanisms of carrier formation. Here, we use an established reconstitution system to visualise the complete, membrane-assembled COPII coat with unprecedented detail by cryo-electron tomography and subtomogram averaging. We discover a network of interactions within and between coat layers, including multiple interfaces that were previously unknown. We reveal the physiological importance of these interactions using genetic and biochemical approaches. A newly resolved Sec31 C-terminal domain provides order to the coat and is essential to drive membrane curvature in cells. Moreover, a novel outer coat assembly mode provides a basis for coat adaptability to varying membrane curvatures. Furthermore, a newly resolved region of Sec23, which we term the L-loop, imparts coat stability and in part dictates membrane shape. Our results suggest these interactions collectively contribute to coat organisation and membrane curvature, providing a structural framework to understand regulatory mechanisms of COPII trafficking and secretion.

Abstract Protein secretion is initiated at the endoplasmic reticulum by the COPII coat, which self-assembles to form vesicles. Here, we examine the mechanisms by which the outer scaffolding layer of the coat drives local assembly of a structure rigid enough to enforce membrane curvature, yet able to readily disassemble at the Golgi. An intrinsically disordered region in the outer coat protein, Sec31, drives binding with an inner coat layer via multiple distinct interfaces. Interactions are individually dispensable but combinatorially reinforce each other, suggesting coat oligomerization is driven by the cumulative effects of multivalent interactions. Such a multimodal assembly platform could be readily reversed at the Golgi via perturbation of each individual interface. These design principles provide an explanation for how cells build a powerful yet transient scaffold to direct vesicle traffic.

Summary Environmental stress can result in substantial damage to proteins, membranes, and genetic material, impacting organismal survival 1-3 . Stress tolerance can be conferred by intrinsically disordered proteins (IDPs) 4 that lack stable tertiary structure. IDPs from the large family of late embryogenesis abundant (LEA) proteins confer a fitness advantage when heterologously expressed 5,6 . Such protection suggests a general molecular function leading to stress tolerance, although the mechanisms remain unclear. Here, we report that a tardigrade LEA protein that confers stress tolerance in yeast acts as a molecular chaperone for the mitochondrial membrane. This protein, named HeLEA1, localizes to the mitochondrial matrix, and harbors conserved LEA sequence motifs that undergo dynamic disorder-to-helical transition upon binding to negatively charged membranes. Yeast expressing HeLEA1 show increased mitochondrial membrane fluidity, increased membrane potential, and enhanced tolerance to hyperosmotic stress under non-fermentative growth without significantly altering mitochondrial lipid composition or triggering a generic stress response. We demonstrate that membrane binding ameliorates excess surface tension, possibly by stabilizing lipid packing defects. Evolutionary analysis suggests that HeLEA1 homologs localize to different membrane-bound organelles and share similar sequence and biophysical features. We suggest that membrane chaperoning by LEA proteins represents a general biophysical solution that can operate across the domains of life.

Wilms tumour 1 (WT1) is a transcription factor and a tumour suppressor, essential for the development and homeostasis of multiple tissues derived from the intermediate and lateral plate mesoderm. Germline WT1 mutations result in the eponymous paediatric kidney cancer, genitourinary anomalies and in some cases congenital diaphragmatic hernia. One common feature in Wilms Tumours (WT), is upregulation of IGF2 through genetic and/or epigenetic mechanisms. Recent studies have identified both somatic and germline mutations in microRNA processing genes (MIRPG) in WT. Whether these different epigenetic and genetic causes converge on common targets and the mechanisms by which they act are still unclear. WT1 is involved in RNA binding and regulates the RNA stability of important developmental genes. We now show that WT1 interacts with let-7 family of microRNAs, and the absence of WT1 results in reduced levels of mature microRNA in cell lines and kidney mesenchyme. As a consequence, let-7 targets, including Igf1 receptor (Igf1r), are upregulated in the absence of Wt1, thus confirming the presence of a WT1-let7-Igf1r axis. These findings suggest a possible mechanism by which WT1 mutations lead to WT, and reinforce the idea that the perturbation of the microRNA and IGF signalling pathways are important contributing factors in the aetiology of WT.