Abstract The structure of the human neocortex underlies species-specific features and is a reflection of intricate developmental programs. Here we analyzed neocortical cellular lineages through a comprehensive assessment of brain somatic mosaicism—which acts as a neutral recorder of lineage history. We employed deep whole genome and variant sequencing in a single postmortem neurotypical human brain across 25 anatomic regions and three distinct modalities: bulk geographies, sorted cell types, and single nuclei. We identified 259 mosaic variants, revealing remarkable differences in localization, clonal abundance, cell type specificity, and clade distribution. We identified a set of hierarchical cellular diffusion barriers, whereby the left-right axis separation of the neocortex occurs prior to anterior-posterior and dorsal-ventral axis separation. We also found that stochastic distribution is a driver of clonal dispersion, and that rules regarding cellular lineages and anatomical boundaries are often ignored. Our data provides a comprehensive analysis of brain somatic mosaicism across the human cerebral cortex, deconvolving clonal distributions and migration patterns in the human embryo. One Sentence Summary Comprehensive evaluation of brain somatic mosaicism in the adult human identifies rules governing cellular distribution during embryogenesis.

Summary Every newborn harbors scores of new single nucleotide variants (SNVs) that may impact health and disease 1–4 ; the majority of these are contributed by the paternal germ cells 5 . In some cases, these mutations are identifiable in a subset of the parents’ cells—a phenomenon called mosaicism, which is capable of producing disease recurrence 6–8 . Here, we provide a comprehensive analysis of male gonadal mosaic mutations, employing 300× whole genome sequencing (WGS) of blood and sperm in 17 healthy individuals, including assessment across multiple samples and age groups. Approximately 1 in 15 healthy males is predicted to harbor a transmissible, likely pathogenic exonic variant that is mosaic in his sperm. In general, only a third of sperm mosaic mutations were detectable in blood cells, all were remarkably stable over the course of months to years, and 23% were present in 5% or more of sperm cells. There was no evidence of age-dependent clonal expansion or collapse, as seen in hematopoiesis. Thus, despite the observed increase of mutations in offspring of men with advanced paternal age, detectable sperm mosaicism remains stable, represents a life-long transmission risk to offspring, and suggests a testis stem cell niche that prevents widespread clonality.

De novo mutations underlie individually rare but collectively common pediatric congenital disorders. Some of these mutations can also be detected in tissues and from cells in a parent, where their abundance and tissue distribution can be measured. We previously reported that a subset of these mutations is detectable in sperm from the father, predicted to impact the health of offspring. Here, in three independent couples undergoing in vitro fertilization, we first assessed male gonadal mosaicism, then assessed the transmission of the mutations to their preimplantation blastocysts. We found an overall predictable transmission but slight under-transmission of mutations to blastocysts based upon measured mutational abundance in sperm, and we replicated this conclusion in an independent family-based cohort. Therefore, unbiased preimplantation genetic testing for gonadal mosaicism may represent a feasible approach to reduce the transmission of potentially harmful de novo mutations, which could help to reduce their impact on miscarriage and pediatric disease.

De novo genetic mutations represent a major contributor to pediatric disease, including autism spectrum disorders (ASD), congenital heart disease, and muscular dystrophies but there are currently no methods to prevent or predict them. These mutations are classically thought to occur either at low levels in progenitor cells or at the time of fertilization and are often assigned a low risk of recurrence in siblings. Here, we directly assess the presence of de novo mutations in paternal sperm and discover abundant, germline-restricted mosaicism. From a cohort of ASD cases, employing single molecule genotyping, we found that four out of 14 fathers were germline mosaic for a putatively causative mutation transmitted to the affected child. Three of these were enriched or exclusively present in sperm at high allelic fractions (AF; 7-15%); and one was recurrently transmitted to two additional affected children, representing clinically actionable information. Germline mosaicism was further assessed by deep (>90x) whole genome sequencing of four paternal sperm samples, which detected 12/355 transmitted de novo single nucleotide variants that were mosaic above 2% AF, and more than two dozen additional, non-transmitted mosaic variants in paternal sperm. Our results demonstrate that germline mosaicism is an underestimated phenomenon, which has important implications for clinical practice and in understanding the basis of human disease. Genetic analysis of sperm can assess individualized recurrence risk following the birth of a child with a de novo disease, as well as the risk in any male planning to have children.