The antiviral restriction factor, tetherin, blocks the release of several different families of enveloped viruses, including the Coronaviridae. Tetherin is an interferon-induced protein that forms parallel homodimers between the host cell and viral particles, linking viruses to the surface of infected cells and inhibiting their release. We demonstrated that SARS-CoV-2 infection causes tetherin downregulation, and that tetherin depletion from cells enhances SARS-CoV-2 viral titres. We investigated the potential viral proteins involved in abrogating tetherin function and found that SARS-CoV-2 ORF3a reduces tetherin localisation within biosynthetic organelles via reduced retrograde recycling and increases tetherin localisation to late endocytic organelles. By removing tetherin from the Coronavirus budding compartments, ORF3a enhances virus release. We also found expression of Spike protein caused a reduction in cellular tetherin levels. Our results confirm that tetherin acts as a host restriction factor for SARS-CoV-2 and highlight the multiple distinct mechanisms by which SARS-CoV-2 subverts tetherin function.

Abstract Pollen-food allergy syndrome (PFAS) affects a significant proportion of the global population with a major health and socioeconomic impact. Patients are generally treated against the major sensitized allergen which does not warrant protection against cross-reactive allergens, leading to long and ineffective treatment regimens. For food allergies, patient guidelines rely on source avoidance, leading to dietary restrictions and reduced quality of life - in particular for those suffering from PFAS. To overcome these limitations, we introduce a novel allergy immunotherapy (AIT) approach utilizing consensus allergens and mRNA technology to achieve broader, safer, and faster desensitization in PFAS patients. We first designed a consensus allergen of orthologs of non-specific Lipid Transfer Proteins (cnsLTP-1) representing a broad spectrum of nsLTP allergens prevalent in food and pollen sources. CnsLTP-1 was delivered to naïve BALB/c mice using mRNA-lipid nanoparticles (mRNA-LNP) as vehicle, or by a traditional protein formulation, to assess if it elicits broad protection against allergens from different sources. Immunization with both mRNA-LNP and protein formulations demonstrated that cnsLTP-1-specific IgGs could be induced, whilst the mRNA-LNP formulation notably avoided the induction of allergen-specific IgEs. The induced antibodies were capable of recognizing and binding to a variety of nsLTPs, and effectively blocked the binding of allergens by allergic patient serum IgEs. This study thus demonstrates that the presented AIT strategy, based on mRNA-LNP technology and consensus allergens, could find clinical utility by addressing the limitations of current AIT. Further development of this technology platform could pave the way for more effective and patient-friendly treatments for PFAS and other cross-reactive allergies.

The recognition of intracellular antigens by CD8+ T cells through T cell receptors (TCRs) is central to adaptive immunity, enabling responses against infections and cancer. The recent approval of TCR-gene-edited T cells for cancer therapy demonstrates the therapeutic advantage of using pMHC recognition to eliminate cancer. However, identification and selection of TCRs from patient material is complex and influenced by the TCR repertoire of the donors used. To overcome these limitations, we here present a rapid and robust de novo binder design platform leveraging state-of-the-art generative models, including RFdiffusion, ProteinMPNN, and AlphaFold2, to engineer minibinders (miBds) targeting the cancer-associated pMHC complex, NY-ESO-1(157-165)/HLA-A*02:01. By incorporating in silico cross-panning and molecular dynamics simulations, we enhanced specificity screening to minimise off-target interactions. We identified a miBd that exhibited high specificity for the NY-ESO-1-derived peptide SLLMWITQC in complex with HLA-A*02:01 and minimal cross-reactivity in mammalian display assays. We further demonstrate the therapeutic potential of this miBd by integrating it into a chimeric antigen receptor, as de novo Binders for Immune-mediated Killing Engagers (BIKEs). BIKE-transduced T cells selectively and effectively killed NY-ESO-1+ melanoma cells compared to non-transduced controls, demonstrating the promise of this approach in precision cancer immunotherapy. Our findings underscore the transformative potential of generative protein design for accelerating the discovery of high-specificity pMHC-targeting therapeutics. Beyond CAR-T applications, our workflow establishes a foundation for developing miBds as versatile tools, heralding a new era of precision immunotherapy.