The movement of workers to act in a desired manner has always consumed the thoughts of managers. In many ways, this goal has been reached through incentive programs, corporate pep talks, and other types of conditional administrative policy, However, as the workers adjust their behaviour in response to one of the aforementioned stimuli, is job satisfaction actualized? The instilling of satisfaction within workers is a crucial task of management. Satisfaction creates confidence, loyalty and ultimately improved quality in the output of the employed. Satisfaction, though, is not the simple result of an incentive program. Employees will most likely not take any more pride in their work even if they win the weekend getaway for having the highest sales. This paper reviews the literature of motivational theorists and draws from their approaches to job satisfaction and the role of motivation within job satisfaction. The theories of Frederick Herzberg and Edwin Locke are presented chronologically to show how Locke’s theory was a response to Herzberg’s theory. By understanding these theories, managers can focus on strategies of creating job satisfaction. This is followed by a brief examination of Kenneth Blanchard and Paul Hersey’s theory on leadership within management and how this art is changing through time.

ABSTRACT Somatic mutations in cancer genes have been ubiquitously detected in clonal expansions across healthy human tissue, including in clonal hematopoiesis. However, mutated and wildtype cells are morphologically and phenotypically similar, limiting the ability to link genotypes with cellular phenotypes. To overcome this limitation, we leveraged multi-modality single-cell sequencing, capturing the mutation with transcriptomes and methylomes in stem and progenitors from individuals with DNMT3A R882 mutated clonal hematopoiesis. DNMT3A mutations resulted in myeloid over lymphoid bias, and in expansion of immature myeloid progenitors primed toward megakaryocytic-erythroid fate. We observed dysregulated expression of lineage and leukemia stem cell markers. DNMT3A R882 led to preferential hypomethylation of polycomb repressive complex 2 targets and a specific sequence motif. Notably, the hypomethylation motif is enriched in binding motifs of key hematopoietic transcription factors, serving as a potential mechanistic link between DNMT3A R882 mutations and aberrant transcriptional phenotypes. Thus, single-cell multi-omics pave the road to defining the downstream consequences of mutations that drive human clonal mosaicism.

ABSTRACT In normal somatic tissue differentiation, changes in chromatin accessibility govern priming and commitment of precursors towards cellular fates. In turn, somatic mutations can disrupt differentiation topologies leading to abnormal clonal outgrowth. However, defining the impact of somatic mutations on the epigenome in human samples is challenging due to admixed mutated and wildtype cells. To chart how somatic mutations disrupt epigenetic landscapes in human clonal outgrowths, we developed Genotyping of Targeted loci with single-cell Chromatin Accessibility (GoT-ChA). This high-throughput, broadly accessible platform links genotypes to chromatin accessibility at single-cell resolution, across thousands of cells within a single assay. We applied GoT-ChA to CD34 + cells from myeloproliferative neoplasm (MPN) patients with JAK2 V617F -mutated hematopoiesis, where the JAK2 mutation is known to perturb hematopoietic differentiation. Differential accessibility analysis between wildtype and JAK2 V617F mutant progenitors revealed both cell-intrinsic and cell state-specific shifts within mutant hematopoietic precursors. An early subset of mutant hematopoietic stem and progenitor cells (HSPCs) exhibited a cell-intrinsic pro-inflammatory signature characterized by increased NF-κB and JUN/FOS transcription factor motif accessibility. In addition, mutant HSPCs showed increased myeloid/erythroid epigenetic priming, preceding increased erythroid and megakaryocytic cellular output. Erythroid progenitors displayed aberrant regulation of the γ-globin locus, providing an intrinsic epigenetic basis for the dysregulated fetal hemoglobin expression observed in MPNs. In contrast, megakaryocytic progenitors exhibited a more specialized inflammatory chromatin landscape relative to early HSPCs, with increased accessibility of pro-fibrotic JUN/FOS transcription factors. Notably, analysis of myelofibrosis patients treated with JAK inhibitors revealed an overall loss of mutant-specific phenotypes without modifying clonal burden, consistent with clinical responses. Finally, expansion of the multi-modality capability of GoT-ChA to integrate mitochondrial genome profiling and cell surface protein expression measurement enabled genotyping imputation and discovery of aberrant cellular phenotypes. Collectively, we show that the JAK2 V617F mutation leads to epigenetic rewiring in a cell-intrinsic and cell type-specific manner. We envision that GoT-ChA will thus serve as a foundation for broad future explorations to uncover the critical link between mutated somatic genotypes and epigenetic alterations across clonal populations in malignant and non-malignant contexts.

Chromosomal instability (CIN) and epigenetic alterations are characteristics of advanced and metastatic cancers [1-4], yet whether they are mechanistically linked is unknown. Here we show that missegregation of mitotic chromosomes, their sequestration in micronuclei [5, 6], and subsequent micronuclear envelope rupture [7] profoundly disrupt normal histone post-translational modifications (PTMs), a phenomenon conserved across humans and mice as well as cancer and non-transformed cells. Some of the changes to histone PTMs occur due to micronuclear envelope rupture whereas others are inherited from mitotic abnormalities prior to micronucleus formation. Using orthogonal techniques, we show that micronuclei exhibit extensive differences in chromatin accessibility with a strong positional bias between promoters and distal or intergenic regions. Finally, we show that inducing CIN engenders widespread epigenetic dysregulation and that chromosomes which transit in micronuclei experience durable abnormalities in their accessibility long after they have been reincorporated into the primary nucleus. Thus, in addition to genomic copy number alterations, CIN can serve as a vehicle for epigenetic reprogramming and heterogeneity in cancer.

ABSTRACT Janus kinases (JAKs) mediate cytokine signaling, cell growth and hematopoietic differentiation. 1 Gain-of-function mutations activating JAK2 signaling are seen in the majority of myeloproliferative neoplasm (MPN) patients, most commonly due to the JAK2 V617F driver allele. 2 While clinically-approved JAK inhibitors improve symptoms and outcomes in MPNs, remissions are rare, and mutant allele burden does not substantively change with chronic JAK inhibitor therapy in most patients. 3, 4 This has been postulated to be due to incomplete dependence on constitutive JAK/STAT signaling, alternative signaling pathways, and/or the presence of cooperating disease alleles; 5 however we hypothesize this is due to the inability of current JAK inhibitors to potently and specifically abrogate mutant JAK2 signaling. We therefore developed a conditionally inducible mouse model allowing for sequential activation, and then inactivation, of Jak2 V617F from its endogenous locus using a Dre- rox /Cre- lox dual orthogonal recombinase system. Deletion of oncogenic Jak2 V617F abrogates the MPN disease phenotype, induces mutant-specific cell loss including in hematopoietic stem/progenitor cells, and extends overall survival to an extent not observed with pharmacologic JAK inhibition. Furthermore, reversal of Jak2 V617F in MPN cells with antecedent loss of Tet2 6, 7 abrogates the MPN phenotype and inhibits mutant stem cell persistence suggesting cooperating epigenetic-modifying alleles do not alter dependence on mutant JAK/STAT signaling. Our results suggest that mutant-specific inhibition of JAK2 V617F represents the best therapeutic approach for JAK2 V617F -mutant MPN and demonstrate the therapeutic relevance of a dual-recombinase system to assess mutant-specific oncogenic dependencies in vivo .