Following its emergence in late 2019, the spread of SARS-CoV-21,2 has been tracked by phylogenetic analysis of viral genome sequences in unprecedented detail3–5. Although the virus spread globally in early 2020 before borders closed, intercontinental travel has since been greatly reduced. However, travel within Europe resumed in the summer of 2020. Here we report on a SARS-CoV-2 variant, 20E (EU1), that was identified in Spain in early summer 2020 and subsequently spread across Europe. We find no evidence that this variant has increased transmissibility, but instead demonstrate how rising incidence in Spain, resumption of travel, and lack of effective screening and containment may explain the variant's success. Despite travel restrictions, we estimate that 20E (EU1) was introduced hundreds of times to European countries by summertime travellers, which is likely to have undermined local efforts to minimize infection with SARS-CoV-2. Our results illustrate how a variant can rapidly become dominant even in the absence of a substantial transmission advantage in favourable epidemiological settings. Genomic surveillance is critical for understanding how travel can affect transmission of SARS-CoV-2, and thus for informing future containment strategies as travel resumes. Analysis of the spread of the 20E (EU1) variant of SARS-CoV-2 through Europe suggests that international travel and insufficient containment, rather than increased transmissibility, led to a resurgence of infections.

SUMMARY The currently expanding monkeypox epidemic is caused by a subclade IIb descendant of a monkeypox virus (MPXV) lineage traced back to Nigeria in 1971. In contrast to monkeypox cases caused by clade I and subclade IIa MPXV, the prognosis of current cases is generally favorable, but person-to-person transmission is much more efficient. MPXV evolution is driven by selective pressure from hosts and loss of virus–host interacting genes. However, there is no satisfactory genetic explanation using single-nucleotide polymorphisms (SNPs) for the observed increased MPXV transmissibility. We hypothesized that key genomic changes may occur in the genome’s low-complexity regions (LCRs), which are highly challenging to sequence and have been dismissed as uninformative. Using a combination of highly sensitive techniques, we determined a first high-quality MPXV genome sequence of a representative of the current epidemic with LCRs resolved at unprecedented accuracy. This effort revealed significant variation in short-tandem repeats within LCRs. We demonstrate that LCR entropy in the MPXV genome is significantly higher than that of SNPs and that LCRs are not randomly distributed. In silico analyses indicate that expression, translation, stability, or function of MPXV orthologous poxvirus genes (OPGs) 153, 204, and 208 could be affected in a manner consistent with the established “genomic accordion” evolutionary strategies of orthopoxviruses. Consequently, we posit that genomic studies focusing on phenotypic MPXV clade-/subclade-/lineage-/strain differences should change their focus to the study of LCR variability instead of SNP variability.

Abstract Background Due to the huge demand for SARS-Cov-2 determination, alternatives to the standard qtPCR tests are potentially useful for increasing the number of samples screened. Our aim was to develop a direct fluorescent PCR capillary-electrophoresis detection of the viral genome. We validated this approach on several SARS-Cov-2 positive and negative samples. Study design We isolated the naso-pharingeal RNA from 20 positive and 10 negative samples. The cDNA was synthesised and two fragments of the SARS-Cov-2 were amplified. One of the primers for each pair was 5’-end fluorochrome labelled. The amplifications were subjected to capillary electrophoresis in ABI3130 sequencers to visualize the fluorescent peaks. Results The two SARS-Cov-2 fragments were successfully amplified in the positive samples, while the negative samples did not render fluorescent peaks. Conclusion We describe and alternative method to identify the SARS-Cov-2 genome that could be scaled to the analysis of approximately 100 samples in less than 5 hours. By combining a standard PCR with capillary electrophoresis our approach would overcome the limits imposed to many labs by the qtPCR (lack of reactive and real-time PCR equipment) and increase the testing capacity.