Lineage-defining transcription factors form densely interconnected circuits in chromatin occupancy assays, but the functional significance of these networks remains underexplored. We reconstructed the functional topology of a leukemia cell transcription network from the direct gene-regulatory programs of eight core transcriptional regulators established in pre-steady state assays coupling targeted protein degradation with nascent transcriptomics. The core regulators displayed narrow, largely non-overlapping direct transcriptional programs, forming a sparsely interconnected functional hierarchy stabilized by incoherent feed-forward loops. BET bromodomain and CDK7 inhibitors disrupted the core regulators' direct programs, acting as mixed agonists/antagonists. The network is predictive of dynamic gene expression behaviors in time-resolved assays and clinically relevant pathway activity in patient populations.

Attenuating aberrant transcriptional circuits holds great promise for the treatment of numerous diseases, including cancer. However, development of transcriptional inhibitors is hampered by the lack of a generally accepted functional cellular readout to characterize their target specificity and on-target activity. We benchmarked the direct gene-regulatory signatures of six agents reported as inhibitors of the oncogenic transcription factor MYB against targeted MYB degradation in a nascent transcriptomics assay. The inhibitors demonstrated partial specificity for MYB target genes but displayed significant off-target activity. Unexpectedly, the inhibitors displayed bimodal on-target effects, acting as mixed agonists-antagonists. Our data uncover unforeseen agonist effects of small molecules originally developed as TF inhibitors and argue that rapid-kinetics benchmarking against degron models should be used for functional characterization of transcriptional modulators.

Summary A small set of lineage-restricted transcription factors (TFs), termed core regulatory circuitry (CRC), control cell identity and malignant transformation. Here, we integrated gene dependency, chromatin architecture and TF perturbation datasets to characterize 31 core TFs in acute myeloid leukemia (AML). Contrary to a widely accepted model, we detected a modular CRC structure with hierarchically organized, partially redundant and only sparsely interconnected modules of core TFs controlling distinct genetic programs. Rapid TF degradation followed by measurement of genome-wide transcription rates revealed that core TFs directly regulate dramatically fewer genes than previously assumed. Leukemias carrying KMT2A (MLL) rearrangements depend on the IRF8/MEF2 axis to directly enforce expression of the key oncogenes MYC, HOXA9 and BCL2. Our datasets provide an evolving model of CRC organization in human cells, and a resource for further inquiries into and therapeutic targeting of aberrant transcriptional circuits in cancer.

ABSTRACT Relapse of acute myeloid leukemia (AML) after allogeneic bone marrow transplantation (alloSCT) has been linked to immune evasion due to reduced expression of major histocompatibility complex class II (MHC-II) proteins through unknown mechanisms. We developed CORENODE, a computational algorithm for genome-wide transcription network decomposition, that identified the transcription factors (TFs) IRF8 and MEF2C as positive regulators and MYB and MEIS1 as negative regulators of MHC-II expression in AML cells. We show that reduced MHC-II expression at relapse is transcriptionally driven by combinatorial changes in the levels of these TFs, acting both independently and through the MHC-II coactivator CIITA. Beyond the MHC-II genes, MYB and IRF8 antagonistically regulate a broad genetic program responsible for cytokine signaling and T-cell stimulation that displays reduced expression at relapse. A small number of cells with altered TF levels and silenced MHC-II expression are present at the time of initial leukemia diagnosis, likely contributing to eventual relapse. Our findings reveal an adaptive transcriptional mechanism of AML evolution after allogenic transplantation whereby combinatorial fluctuations of TF levels under immune pressure result in selection of cells with a silenced T-cell stimulation program.