HM
Holden Maecker
Author with expertise in Natural Killer Cells in Immunity
Achievements
Cited Author
Open Access Advocate
Key Stats
Upvotes received:
0
Publications:
41
(73% Open Access)
Cited by:
8,072
h-index:
80
/
i10-index:
235
Reputation
Biology
< 1%
Chemistry
< 1%
Economics
< 1%
Show more
How is this calculated?
Publications
0

The tetraspanin superfamily: molecular facilitators

Holden Maecker et al.May 1, 1997
A legacy of molecular evolution is the formation of gene families encoding proteins that often serve related functions. One such family gaining recent attention is the tetraspanin superfamily, whose membership has grown to nearly 20 known genes since its discovery in 1990. All encode cell-surface proteins that span the membrane four times, forming two extracellular loops. Some of these genes are found in organisms as primitive as schistosomes and nematodes. Alternately known as the transmembrane 4 (TM4) superfamily or the TM4SF, 4TM, or tetraspan family, we propose here that the name tetraspanins be used for the purpose of standardization. What do the tetraspanins do? Awaiting definitive functional studies, we can only put together pieces of a puzzle that has been built by raising antibodies against these proteins and looking at their distribution, associations, and functions. A brief overview indicates that some tetraspanins are found in virtually all tissues (CD81, CD82, CD9, CD63), whereas others are highly restricted, such as CD37 (B cells) or CD53 (lymphoid and myeloid cells). Many of these proteins have a flair for promiscuous associations with other molecules, including lineage-specific proteins, integrins, and other tetraspanins. In terms of function, they are involved in diverse processes such as cell activation and proliferation, adhesion and motility, differentiation, and cancer. We propose that these functions may all relate to their ability to act as "molecular facilitators," grouping specific cell-surface proteins and thus increasing the formation and stability of functional signaling complexes.
0

In vivo detection and imaging of phosphatidylserine expression during programmed cell death

Francis Blankenberg et al.May 26, 1998
One of the earliest events in programmed cell death is the externalization of phosphatidylserine, a membrane phospholipid normally restricted to the inner leaflet of the lipid bilayer. Annexin V, an endogenous human protein with a high affinity for membrane bound phosphatidylserine, can be used in vitro to detect apoptosis before other well described morphologic or nuclear changes associated with programmed cell death. We tested the ability of exogenously administered radiolabeled annexin V to concentrate at sites of apoptotic cell death in vivo . After derivatization with hydrazinonicotinamide, annexin V was radiolabeled with technetium 99m. In vivo localization of technetium 99m hydrazinonicotinamide-annexin V was tested in three models: fuminant hepatic apoptosis induced by anti-Fas antibody injection in BALB/c mice; acute rejection in ACI rats with transplanted heterotopic PVG cardiac allografts; and cyclophosphamide treatment of transplanted 38C13 murine B cell lymphomas. External radionuclide imaging showed a two- to sixfold increase in the uptake of radiolabeled annexin V at sites of apoptosis in all three models. Immunohistochemical staining of cardiac allografts for exogenously administered annexin V revealed intense staining of numerous myocytes at the periphery of mononuclear infiltrates of which only a few demonstrated positive apoptotic nuclei by the terminal deoxynucleotidyltransferase-mediated UTP end labeling method. These results suggest that radiolabeled annexin V can be used in vivo as a noninvasive means to detect and serially image tissues and organs undergoing programmed cell death.
56

Systems vaccinology of the BNT162b2 mRNA vaccine in humans

Prabhu Arunachalam et al.Jul 12, 2021
The emergency use authorization of two mRNA vaccines in less than a year from the emergence of SARS-CoV-2 represents a landmark in vaccinology1,2. Yet, how mRNA vaccines stimulate the immune system to elicit protective immune responses is unknown. Here we used a systems vaccinology approach to comprehensively profile the innate and adaptive immune responses of 56 healthy volunteers who were vaccinated with the Pfizer–BioNTech mRNA vaccine (BNT162b2). Vaccination resulted in the robust production of neutralizing antibodies against the wild-type SARS-CoV-2 (derived from 2019-nCOV/USA_WA1/2020) and, to a lesser extent, the B.1.351 strain, as well as significant increases in antigen-specific polyfunctional CD4 and CD8 T cells after the second dose. Booster vaccination stimulated a notably enhanced innate immune response as compared to primary vaccination, evidenced by (1) a greater frequency of CD14+CD16+ inflammatory monocytes; (2) a higher concentration of plasma IFNγ; and (3) a transcriptional signature of innate antiviral immunity. Consistent with these observations, our single-cell transcriptomics analysis demonstrated an approximately 100-fold increase in the frequency of a myeloid cell cluster enriched in interferon-response transcription factors and reduced in AP-1 transcription factors, after secondary immunization. Finally, we identified distinct innate pathways associated with CD8 T cell and neutralizing antibody responses, and show that a monocyte-related signature correlates with the neutralizing antibody response against the B.1.351 variant. Collectively, these data provide insights into the immune responses induced by mRNA vaccination and demonstrate its capacity to prime the innate immune system to mount a more potent response after booster immunization. Profiling the immune responses of 56 volunteers vaccinated with BNT162b2 reveals how this mRNA vaccine primes the innate immune system to mount a potent response to SARS-CoV-2 after booster immunization.
56
Citation399
0
Save
Load More