Activated CD8 + T cells play a critical role in host defense against viruses, intracellular microbes, and tumors. It is not clear if a key regulatory transcription factor unites the effector functions of CD8 + T cells. We now show that Eomesodermin ( Eomes ), a paralogue of T-bet , is induced in effector CD8 + T cells in vitro and in vivo. Ectopic expression of Eomes was sufficient to invoke attributes of effector CD8 + T cells, including interferon-γ (IFN-γ), perforin, and granzyme B. Loss-of-function analysis suggests Eomes may also be necessary for full effector differentiation of CD8 + T cells. We suggest that Eomesodermin is likely to complement the actions of T-bet and act as a key regulatory gene in the development of cell-mediated immunity.

During acute infections, a small population of effector CD8(+) T cells evades terminal differentiation and survives as long-lived memory T cells. We demonstrate that the transcriptional repressor Blimp-1 enhanced the formation of terminally differentiated CD8(+) T cells during lymphocytic choriomeningitis virus (LCMV) infection, and Blimp-1 deficiency promoted the acquisition of memory cell properties by effector cells. Blimp-1 expression was preferentially increased in terminally differentiated effector and "effector memory" (Tem) CD8(+) T cells, and gradually decayed after infection as central memory (Tcm) cells developed. Blimp-1-deficient effector CD8(+) T cells showed some reduction in effector molecule expression, but primarily developed into memory precursor cells that survived better and more rapidly acquired several Tcm cell attributes, including CD62L and IL-2 expression and enhanced proliferative responses. These results reveal a critical role for Blimp-1 in controlling terminal differentiation and suppressing memory cell developmental potential in effector CD8(+) T cells during viral infection.

All brain areas affected in Parkinson's disease (PD) show an abundance of microglia with an activated morphology together with increased expression of pro-inflammatory cytokines, suggesting that neuroinflammation may contribute to the neurodegenerative process in this common and incurable disorder. We applied a single nucleus RNA- and ATAC-sequencing approach using the 10x Genomics Chromium platform to postmortem PD samples to investigate microglial heterogeneity in PD. We created a multiomic dataset using substantia nigra (SN) tissues from 19 PD donors and 14 non-PD controls (NPCs), as well as three other brain regions from the PD donors which are differentially affected in this disease: the ventral tegmental area (VTA), substantia inominata (SI), and hypothalamus (HypoTs). We identified thirteen microglial subpopulations within these tissues as well as a perivascular macrophage and a monocyte population, of which we characterized the transcriptional and chromatin repertoires. Using this data, we investigated whether these microglial subpopulations have any association with PD and whether they have regional specificity. We uncovered several changes in microglial subpopulations in PD, which appear to parallel the magnitude of neurodegeneration across these four selected brain regions. Specifically, we identified that inflammatory microglia in PD are more prevalent in the SN and differentially express PD-associated markers. Our analysis revealed the depletion of a CD83 and HIF1A- expressing microglial subpopulation, specifically in the SN in PD, that has a unique chromatin signature compared to other microglial subpopulations. Interestingly, this microglial subpopulation has regional specificity to the brainstem in non-disease tissues. Furthermore, it is highly enriched for transcripts of proteins involved in antigen presentation and heat-shock proteins, and its depletion in the PD SN may have implications for neuronal vulnerability in disease.