Abstract Mitochondrial ribosomes are specialized for the synthesis of membrane proteins responsible for oxidative phosphorylation. Mammalian mitoribosomes diverged considerably from the ancestral bacterial ribosomes and feature dramatically reduced ribosomal RNAs. Structural basis of the mammalian mitochondrial ribosome assembly is currently not understood. Here we present eight distinct assembly intermediates of the human large mitoribosomal subunit involving 7 assembly factors. We discover that NSUN4-MTERF4 dimer plays a critical role in the process by stabilizing the 16S rRNA in a conformation that exposes the functionally important regions of rRNA for modification by MRM2 methyltransferase and quality control interactions with a conserved mitochondrial GTPase MTG2 that contacts the sarcin ricin loop and the immature active site. The successive action of these factors leads to the formation of the peptidyl transferase active site of the mitoribosome and the folding of the surrounding rRNA regions responsible for interactions with tRNAs and the small ribosomal subunit.

Summary Nonstructural protein 1 (Nsp1) produced by coronaviruses shuts down host protein synthesis in infected cells. The C-terminal domain of SARS-CoV-2 Nsp1 was shown to bind to the small ribosomal subunit to inhibit translation, but it is not clear whether this mechanism is broadly used by coronaviruses, whether the N-terminal domain of Nsp1 binds the ribosome, or how Nsp1 specifically permits translation of viral mRNAs. Here, we investigated Nsp1 from three representative Betacoronaviruses – SARS-CoV-2, MERS-CoV, and Bat-Hp-CoV – using structural, biophysical, and biochemical assays. We revealed a conserved mechanism of host translational shutdown across the three coronaviruses. We further demonstrated that the N-terminal domain of Bat-Hp-CoV Nsp1 binds to the decoding center of the 40S subunit, where it would prevent mRNA and eIF1A binding. Structure-based biochemical experiments identified a conserved role of these inhibitory interactions in all three coronaviruses and showed that the same regions of Nsp1 are responsible for the preferential translation of viral mRNAs. Our results provide a mechanistic framework to understand how Betacoronaviruses overcome translational inhibition to produce viral proteins.

Summary The mitochondrial translation system originates from a bacterial ancestor but has substantially diverged in the course of evolution. Here, we use single particle cryo-EM as a screening tool to identify mitochondrial translation termination mechanisms and to describe them in molecular detail. We show how mitochondria release factor 1a releases the nascent chain from the ribosome when it encounters the canonical stop codons UAA and UAG. Furthermore, we define how the peptidyl-tRNA hydrolase ICT1 acts as a rescue factor on mitoribosomes that have stalled on truncated messages to recover them for protein synthesis. Finally, we present near-atomic models detailing the process of mitochondrial ribosome recycling, to explain how a dedicated elongation factor, mtEFG2, has specialized for cooperation with the mitochondrial ribosome recycling factor to dissociate the mitoribosomal subunits at the end of the translation process. (134 words)