Abstract The ongoing evolution of SARS-CoV-2 has resulted in the emergence of Omicron, which displays striking immune escape potential. Many of its mutations localize to the spike protein ACE2 receptor-binding domain, annulling the neutralizing activity of most therapeutic monoclonal antibodies. Here we describe a receptor-blocking human monoclonal antibody, 87G7, that retains ultrapotent neutralization against SARS-CoV-2 variants including the Alpha, Beta, Gamma, Delta and Omicron (BA.1/BA.2) Variants-of-Concern (VOCs). Structural analysis reveals that 87G7 targets a patch of hydrophobic residues in the ACE2-binding site that are highly conserved in SARS-CoV-2 variants, explaining its broad neutralization capacity. 87G7 protects mice and/or hamsters against challenge with all current SARS-CoV-2 VOCs. Our findings may aid the development of sustainable antibody-based strategies against COVID-19 that are more resilient to SARS-CoV-2 antigenic diversity. One sentence summary A human monoclonal antibody confers broad neutralization and protection against Omicron and other SARS-CoV-2 variants

Abstract We previously showed that single amino acid substitutions at seven positions in hemagglutinin determined major antigenic change of influenza H3N2 virus. Here, the impact of two such substitutions was tested in eleven representative H3 hemagglutinins to investigate context-dependence effects. The antigenic effect of substitutions introduced at hemagglutinin position 145 was fully independent of the amino acid context of the representative hemagglutinins. Antigenic change caused by substitutions introduced at hemagglutinin position 155 was variable and context-dependent. Our results suggest that epistatic interactions with contextual amino acids in the hemagglutinin can moderate the magnitude of antigenic change.

Recent reports documenting sporadic infections in carnivorous mammals worldwide with highly pathogenic avian influenza virus (HPAIV) H5N1 clade 2.3.4.4b have raised concerns about the potential risk of adaptation to sustained transmission in mammals, including humans. We report H5N1 clade 2.3.4.4b infection of two grey seals ( Halichoerus grypus ) from coastal waters of The Netherlands and Germany in December 2022 and February 2023, respectively. Histological and immunohistochemical investigations showed in both animals a non-suppurative and necrotizing encephalitis with viral antigen restricted to the neuroparenchyma. Whole genome sequencing showed the presence of HPAIV H5N1 clade 2.3.4.4b strains in brain tissue, which were closely related to sympatric avian influenza viruses. Viral RNA was also detected in the lung of the seal from Germany by real-time quantitative PCR. No other organs tested positive. The mammalian adaptation PB2-E627K mutation was identified in approximately 40% of the virus population present in the brain tissue of the German seal. Retrospective screening for nucleoprotein specific antibodies, of sera collected from 251 seals sampled in this region from 2020 to 2023, did not show evidence of influenza A virus specific antibodies. Similarly, screening by reverse transcription PCR of lung and brain tissue of 101 seals that had died along the Dutch coast in the period 2020-2021, did not show evidence of influenza virus infection. Collectively, these results indicate that individual seals are sporadically infected with HPAIV-H5N1 clade 2.3.4.4b, resulting in an encephalitis in the absence of a systemic infection, and with no evidence thus far of onward spread between seals.