Portal vein tumor thrombus (PVTT) is strongly correlated to a poor prognosis for patients with hepatocellular carcinoma (HCC). In this study, we uncovered a causative link between hepatitis B virus (HBV) infection and development of PVTT. Mechanistically, elevated TGF-β activity, associated with the persistent presence of HBV in the liver tissue, suppresses the expression of microRNA-34a, leading to enhanced production of chemokine CCL22, which recruits regulatory T (Treg) cells to facilitate immune escape. These findings strongly suggest that HBV infection and activity of the TGF-β-miR-34a-CCL22 axis serve as potent etiological factors to predispose HCC patients for the development of PVTT, possibly through the creation of an immune-subversive microenvironment to favor colonization of disseminated HCC cells in the portal venous system.

Abstract Patient derived tumor organoids (PDTOs) have become relevant pre-clinical models for therapeutic modelling since they highly recapitulate patients’ response to treatment. Nevertheless, their value for immunotherapy modelling has not been fully explored. We developed a tumor processing protocol that enable the establishment of PDTOs and tumor infiltrating lymphocytes (TILs) isolation. By the optimization of functional assays, we compared the T-cells effector functions of matching PBMCs and TILs, demonstrating that PBMCs after co-culture and TILs after initial expansion display similar responses. In addition, the evaluation of cytokine production by fluorospot in combination with an image-based killing assay enable the screening of different immune-checkpoint inhibitors as well as its combination with target inhibitors. Our proof-of-concept functional assays showed the potential and versatility of PDTOs and T-cells co-culture systems for immunotherapy screening. The optimization of scalable functional assays downstream co-culture represents a significant step forward to increase the value of PDTOs as pre-clinical models for immunotherapeutic screens.