Abstract Epstein-Barr virus (EBV) is associated with 200,000 cancers annually, including B-cell lymphomas in immunosuppressed hosts. Hypomorphic mutations of the de novo pyrimidine synthesis pathway enzyme cytidine 5’ triphosphate synthase 1 (CTPS1) suppress cell mediated immunity, resulting in fulminant EBV infection and EBV+ central nervous system (CNS) lymphomas. Since CTP is a critical precursor for DNA, RNA and phospholipid synthesis, this observation raises the question of whether the isozyme CTPS2 or cytidine salvage pathways help meet CTP demand in EBV-infected B-cells. Here, we found that EBV upregulated CTPS1 and CTPS2 with distinct kinetics in newly infected B-cells. While CRISPR CTPS1 knockout caused DNA damage and proliferation defects in lymphoblastoid cell lines (LCL), which express the EBV latency III program observed in CNS lymphomas, double CTPS1/2 knockout caused stronger phenotypes. EBNA2, MYC and non-canonical NF-□B positively regulated CTPS1 expression. CTPS1 depletion impaired EBV lytic DNA synthesis, suggesting that latent EBV may drive pathogenesis with CTPS1 deficiency. Cytidine rescued CTPS1/2 deficiency phenotypes in EBV-transformed LCL and Burkitt B-cells, highlighting CTPS1/2 as a potential therapeutic target for EBV-driven lymphoproliferative disorders. Collectively, our results suggest that CTPS1 and CTPS2 have partially redundant roles in EBV-transformed B-cells and provide insights into EBV pathogenesis with CTPS1 deficiency.

Classic Hodgkin Lymphoma (cHL) is a tumor composed of rare malignant Hodgkin and Reed-Sternberg (HRS) cells nested within a T-cell rich inflammatory immune infiltrate. cHL is associated with Epstein-Barr Virus (EBV) in 25% of cases. The specific contributions of EBV to the pathogenesis of cHL remain largely unknown, in part due to technical barriers in dissecting the tumor microenvironment (TME) in high detail. Herein, we applied multiplexed ion beam imaging (MIBI) spatial pro-teomics on 6 EBV-positive and 14 EBV-negative cHL samples. We identify key TME features that distinguish between EBV-positive and EBV-negative cHL, including the relative predominance of memory CD8 T cells and increased T-cell dysfunction as a function of spatial proximity to HRS cells. Building upon a larger multi-institutional cohort of 22 EBV-positive and 24 EBV-negative cHL samples, we orthogonally validated our findings through a spatial multi-omics approach, coupling whole transcriptome capture with antibody-defined cell types for tu-mor and T-cell populations within the cHL TME. We delineate contrasting transcriptomic immunological signatures between EBV-positive and EBV-negative cases that differently impact HRS cell proliferation, tumor-immune interactions, and mecha-nisms of T-cell dysregulation and dysfunction. Our multi-modal framework enabled a comprehensive dissection of EBV-linked reorganization and immune evasion within the cHL TME, and highlighted the need to elucidate the cellular and molecular fac-tors of virus-associated tumors, with potential for targeted therapeutic strategies.

ABSTRACT Epstein–Barr virus (EBV) establishes persistent infection, causes infectious mononucleosis, is a major trigger for multiple sclerosis and contributes to multiple cancers. Yet, knowledge remains incomplete about how the virus remodels host B cells to support lytic replication. We previously identified that EBV lytic replication results in selective depletion of plasma membrane B-cell receptor (BCR) complexes, comprised of immunoglobulin and the CD79A and CD79B signaling chains. Here, we used proteomic and biochemical approaches to identify that the EBV early lytic protein BALF0/1 is responsible for EBV lytic cycle BCR degradation. Mechanistically, an immunoglobulin heavy chain cytoplasmic tail KVK motif was required for ubiquitin-mediated BCR degradation, while CD79A and CD79B were dispensable. BALF0/1 subverted caveolin-mediated endocytosis to internalize plasma membrane BCR complexes and to deliver them to the endoplasmic reticulum. BALF0/1 stimulated immunoglobulin heavy chain cytoplasmic tail ubiquitination, which together with the ATPase valosin-containing protein/p97 drove ER-associated degradation of BCR complexes by cytoplasmic proteasomes. BALF0/1 knockout reduced the viral load of secreted EBV particles from B-cells that expressed a monoclonal antibody against EBV glycoprotein 350 and increased viral particle immunoglobulin incorporation. Consistent with downmodulation of plasma membrane BCR, BALF0/1 overexpression reduced viability of a diffuse large B-cell lymphoma cell line dependent upon BCR signaling. Collectively, our results suggest that EBV BALF0/1 downmodulates immunoglobulin upon lytic reactivation to block BCR signaling and support virion release. SIGNIFICANCE EBV uses a biphasic lifecycle, in which it switches between a latent state that facilitates immune evasion and a lytic state, where virion are secreted. However, when EBV infects a B-cell that makes antibody against a virion protein, EBV must have a strategy to escape becoming trapped, since maturing virion and antibody each traffic through the secretory pathway. We identified that an EBV-encoded protein expressed, BALF0/1, associates with and targets immunoglobulin complexes for degradation. Intriguingly, BALF0/1 subverts the caveolin-1 and ERAD pathways to route antibody from the plasma membrane to cytoplasmic proteasomes for degradation. We present evidence that this enhances EBV secretion from cells that produce antibody against a viral glycoprotein, which could otherwise trap virus.