MW
Michael Washburn
Author with expertise in Ubiquitin-Proteasome Proteolytic Pathway
Achievements
Cited Author
Open Access Advocate
Key Stats
Upvotes received:
0
Publications:
56
(61% Open Access)
Cited by:
20,149
h-index:
85
/
i10-index:
232
Reputation
Biology
< 1%
Chemistry
< 1%
Economics
< 1%
Show more
How is this calculated?
Publications
0

An Automated Multidimensional Protein Identification Technology for Shotgun Proteomics

Dirk Wolters et al.Oct 25, 2001
We describe an automated method for shotgun proteomics named multidimensional protein identification technology (MudPIT), which combines multidimensional liquid chromatography with electrospray ionization tandem mass spectrometry. The multidimensional liquid chromatography method integrates a strong cation-exchange (SCX) resin and reversed-phase resin in a biphasic column. We detail the improvements over a system described by Link et al. (Link, A. J.; Eng, J.; Schieltz, D. M.; Carmack, E.; Mize, G. J.; Morris, D. R.; Garvik, B. M.; Yates, J. R., III. Nat. Biotechnol. 1999, 17, 676−682) that separates and acquires tandem mass spectra for thousands of peptides. Peptides elute off the SCX phase by increasing pI, and elution off the SCX material is evenly distributed across an analysis. In addition, we describe the chromatographic benchmarks of MudPIT. MudPIT was reproducible within 0.5% between two analyses. Furthermore, a dynamic range of 10 000 to 1 between the most abundant and least abundant proteins/peptides in a complex peptide mixture has been demonstrated. By improving sample preparation along with separations, the method improves the overall analysis of proteomes by identifying proteins of all functional and physical classes.
0

The CRAPome: a contaminant repository for affinity purification–mass spectrometry data

Dattatreya Mellacheruvu et al.Jul 7, 2013
The Contaminant Repository for Affinity Purification (CRAPome) is a database of annotated negative control-data that can be used for filtering out nonspecific interactions in affinity purification-mass spectrometry experiments. Affinity purification coupled with mass spectrometry (AP-MS) is a widely used approach for the identification of protein-protein interactions. However, for any given protein of interest, determining which of the identified polypeptides represent bona fide interactors versus those that are background contaminants (for example, proteins that interact with the solid-phase support, affinity reagent or epitope tag) is a challenging task. The standard approach is to identify nonspecific interactions using one or more negative-control purifications, but many small-scale AP-MS studies do not capture a complete, accurate background protein set when available controls are limited. Fortunately, negative controls are largely bait independent. Hence, aggregating negative controls from multiple AP-MS studies can increase coverage and improve the characterization of background associated with a given experimental protocol. Here we present the contaminant repository for affinity purification (the CRAPome) and describe its use for scoring protein-protein interactions. The repository (currently available for Homo sapiens and Saccharomyces cerevisiae) and computational tools are freely accessible at http://www.crapome.org/ .
0

Vpx relieves inhibition of HIV-1 infection of macrophages mediated by the SAMHD1 protein

Kasia Hrecka et al.Jun 1, 2011
HIV-1 is unable to replicate efficiently in dendritic cells, the antigen-presenting tissue cells that function in both innate and adaptive immunity. Other primate lentiviruses, including HIV-2 and some simian immunodeficiency viruses, express a protein called Vpx that is able to overcome the block to replication. Two groups now report the identification of the restriction factor in dendritic cells and macrophages that is overcome by Vpx. Vpx is found to induce degradation of the protein SAMHD1. Mutations in SAMHD1 cause Aicardi–Goutières syndrome, a disorder characterized by inappropriate activation of the immune system. Knockdown of SAMHD1 increases HIV-1 replication in dendritic cells, which could be important for generating appropriate immune responses to the virus. Macrophages and dendritic cells have key roles in viral infections, providing virus reservoirs that frequently resist antiviral therapies and linking innate virus detection to antiviral adaptive immune responses1,2. Human immunodeficiency virus 1 (HIV-1) fails to transduce dendritic cells and has a reduced ability to transduce macrophages, due to an as yet uncharacterized mechanism that inhibits infection by interfering with efficient synthesis of viral complementary DNA3,4. In contrast, HIV-2 and related simian immunodeficiency viruses (SIVsm/mac) transduce myeloid cells efficiently owing to their virion-associated Vpx accessory proteins, which counteract the restrictive mechanism5,6. Here we show that the inhibition of HIV-1 infection in macrophages involves the cellular SAM domain HD domain-containing protein 1 (SAMHD1). Vpx relieves the inhibition of lentivirus infection in macrophages by loading SAMHD1 onto the CRL4DCAF1 E3 ubiquitin ligase, leading to highly efficient proteasome-dependent degradation of the protein. Mutations in SAMHD1 cause Aicardi–Goutières syndrome, a disease that produces a phenotype that mimics the effects of a congenital viral infection7,8. Failure to dispose of endogenous nucleic acid debris in Aicardi–Goutières syndrome results in inappropriate triggering of innate immune responses via cytosolic nucleic acids sensors9,10. Thus, our findings show that macrophages are defended from HIV-1 infection by a mechanism that prevents an unwanted interferon response triggered by self nucleic acids, and uncover an intricate relationship between innate immune mechanisms that control response to self and to retroviral pathogens.
0
Citation1,126
0
Save
0

Shotgun identification of protein modifications from protein complexes and lens tissue

Michael MacCoss et al.Jun 11, 2002
Large-scale genomics has enabled proteomics by creating sequence infrastructures that can be used with mass spectrometry data to identify proteins. Although protein sequences can be deduced from nucleotide sequences, posttranslational modifications to proteins, in general, cannot. We describe a process for the analysis of posttranslational modifications that is simple, robust, general, and can be applied to complicated protein mixtures. A protein or protein mixture is digested by using three different enzymes: one that cleaves in a site-specific manner and two others that cleave nonspecifically. The mixture of peptides is separated by multidimensional liquid chromatography and analyzed by a tandem mass spectrometer. This approach has been applied to modification analyses of proteins in a simple protein mixture, Cdc2p protein complexes isolated through the use of an affinity tag, and lens tissue from a patient with congenital cataracts. Phosphorylation sites have been detected with known stoichiometry of as low as 10%. Eighteen sites of four different types of modification have been detected on three of the five proteins in a simple mixture, three of which were previously unreported. Three proteins from Cdc2p isolated complexes yielded eight sites containing three different types of modifications. In the lens tissue, 270 proteins were identified, and 11 different crystallins were found to contain a total of 73 sites of modification. Modifications identified in the crystallin proteins included Ser, Thr, and Tyr phosphorylation, Arg and Lys methylation, Lys acetylation, and Met, Tyr, and Trp oxidations. The method presented will be useful in discovering co- and posttranslational modifications of proteins.
Load More