Summary Biomolecular structure analysis from experimental NMR studies generally relies on restraints derived from a combination of experimental and knowledge-based data. A challenge for the structural biology community has been a lack of standards for representing these restraints, preventing the establishment of uniform methods of model-vs-data structure validation against restraints and limiting interoperability between restraint-based structure modeling programs. The NMR exchange (NEF) and NMR-STAR formats provide a standardized approach for representing commonly used NMR restraints. Using these restraint formats, a standardized validation system for assessing structural models of biopolymers against restraints has been developed and implemented in the wwPDB OneDep data deposition-validation-biocuration system. The resulting wwPDB Restraint Violation Report provides a model vs. data assessment of biomolecule structures determined using distance and dihedral restraints, with extensions to other restraint types currently being implemented. These tools are useful for assessing NMR models, as well as for assessing biomolecular structure predictions based on distance restraints. Graphical Abstract Highlights PDB Structure Validation Report expanded to include Restraint Analysis NMR Exchange Format (NEF) and NMR-STAR for distance restraint representation Standard distance and dihedral restraint formats for model vs. restraint assessment Standardized restraint formats provide interoperability between modeling programs

Abstract Databases are invaluable for the identification of individual metabolites in untargeted metabolomics analyses, providing annotated pure metabolite references that allow for comparisons with experimentally collected mixture samples. Despite the value of an extensive reference database, publicly available databases for NMR-based metabolomics are often incomplete with respect to experimental conditions and derived NMR annotation parameters, such as peak positions. Hence, they are not designed for visualising the reference spectra alongside an experimental sample spectrum of interest, thus limiting the usefulness of the database. As a consequence, researchers have resorted to their own user- or application based database implementations. In this paper we describe the collection, remediation and integration of annotation data from the publicly available HMDB, BRMB and GISMO NMR metabolomics databases to build the CcpNmr Analysis Simulated Metabolomics Database (CASMDB) that contains 1932 unique metabolite entries. This database, in concert with the AnalysisMetabolomics programme, also allows or accurate simulation of spectra at arbitrary field strengths. Together, these tools underpin the visualising of experimental and simulated metabolite references and their usage in 1D 1 H NMR-based metabolomics studies.