To explore the biology of lung adenocarcinoma (LUAD) and identify new therapeutic opportunities, we performed comprehensive proteogenomic characterization of 110 tumors and 101 matched normal adjacent tissues (NATs) incorporating genomics, epigenomics, deep-scale proteomics, phosphoproteomics, and acetylproteomics. Multi-omics clustering revealed four subgroups defined by key driver mutations, country, and gender. Proteomic and phosphoproteomic data illuminated biology downstream of copy number aberrations, somatic mutations, and fusions and identified therapeutic vulnerabilities associated with driver events involving KRAS, EGFR, and ALK. Immune subtyping revealed a complex landscape, reinforced the association of STK11 with immune-cold behavior, and underscored a potential immunosuppressive role of neutrophil degranulation. Smoking-associated LUADs showed correlation with other environmental exposure signatures and a field effect in NATs. Matched NATs allowed identification of differentially expressed proteins with potential diagnostic and therapeutic utility. This proteogenomics dataset represents a unique public resource for researchers and clinicians seeking to better understand and treat lung adenocarcinomas.

All coronaviruses known to have recently emerged as human pathogens probably originated in bats1. Here we use a single experimental platform based on immunodeficient mice implanted with human lung tissue (hereafter, human lung-only mice (LoM)) to demonstrate the efficient in vivo replication of severe acute respiratory syndrome coronavirus (SARS-CoV), Middle East respiratory syndrome coronavirus (MERS-CoV) and severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2), as well as two endogenous SARS-like bat coronaviruses that show potential for emergence as human pathogens. Virus replication in this model occurs in bona fide human lung tissue and does not require any type of adaptation of the virus or the host. Our results indicate that bats contain endogenous coronaviruses that are capable of direct transmission to humans. Our detailed analysis of in vivo infection with SARS-CoV-2 in human lung tissue from LoM showed a predominant infection of human lung epithelial cells, including type-2 pneumocytes that are present in alveoli and ciliated airway cells. Acute infection with SARS-CoV-2 was highly cytopathic and induced a robust and sustained type-I interferon and inflammatory cytokine and chemokine response. Finally, we evaluated a therapeutic and pre-exposure prophylaxis strategy for SARS-CoV-2 infection. Our results show that therapeutic and prophylactic administration of EIDD-2801—an oral broad-spectrum antiviral agent that is currently in phase II/III clinical trials—markedly inhibited SARS-CoV-2 replication in vivo, and thus has considerable potential for the prevention and treatment of COVID-19. Human and bat coronaviruses replicate efficiently in immunodeficient mice implanted with human lung tissue, and treatment or prophylaxis using EIDD-2801 in this model suggests that this oral antiviral agent may be effective in preventing COVID-19.

Abstract Drosophila prolongata is a member of the melanogaster species group and rhopaloa subgroup native to the subtropical highlands of southeast Asia. This species exhibits an array of recently evolved male-specific morphological, physiological, and behavioral traits that distinguish it from its closest relatives, making it an attractive model for studying the evolution of sexual dimorphism and testing theories of sexual selection. The lack of genomic resources has impeded the dissection of the molecular basis of sex-specific development and behavior in this species. To address this, we assembled the genome of D. prolongata using long-read sequencing and Hi-C scaffolding, resulting in a highly complete and contiguous (scaffold N50 2.2Mb) genome assembly of 220Mb. The repetitive content of the genome is 24.6%, the plurality of which are LTR retrotransposons (33.2%). Annotations based on RNA-seq data and homology to related species revealed a total of 19,330 genes, of which 16,170 are protein-coding. The assembly includes 98.5% of Diptera BUSCO genes, including 93.8% present as a single copy. Despite some likely regional duplications, the completeness of this genome suggests that it can be readily used for gene expression, GWAS, and other genomic analyses.