Abstract

 We have studied the diffusion of tracer proteins in highly concentrated random-coil polymer and globular protein solutions imitating the crowded conditions encountered in cellular environments. Using fluorescence correlation spectroscopy, we measured the anomalous diffusion exponent α characterizing the dependence of the mean-square displacement of the tracer proteins on time, 〈r²(t)〉∼t^α. We observed that the diffusion of proteins in dextran solutions with concentrations up to 400g/l is subdiffusive (α<1) even at low obstacle concentration. The anomalous diffusion exponent α decreases continuously with increasing obstacle concentration and molecular weight, but does not depend on buffer ionic strength, and neither does it depend strongly on solution temperature. At very high random-coil polymer concentrations, α reaches a limit value of α_l≈3/4, which we take to be the signature of a coupling between the motions of the tracer proteins and the segments of the dextran chains. A similar, although less pronounced, subdiffusive behavior is observed for the diffusion of streptavidin in concentrated globular protein solutions. These observations indicate that protein diffusion in the cell cytoplasm and nucleus should be anomalous as well, with consequences for measurements of solute diffusion coefficients in cells and for the modeling of cellular processes relying on diffusion.

Summary

 In normal circumstances, the Bcl-2 family dutifully governs when cells die. However, the rules of engagement between the pro- and antiapoptotic family members are still contested, and how Bax is transformed from a cytosolic monomer to an outer mitochondrial membrane-permeabilizing oligomer is unclear. With fluorescence techniques and an in vitro system, the combination of tBid and Bax produced dramatic membrane permeabilization. The membrane is not a passive partner in this process beause membranes are required for the protein-protein interactions to occur. Simultaneous measurements of these interactions revealed an ordered series of steps required for outer membrane permeabilization: (1) tBid rapidly binds to membranes, where (2) tBid interacts with Bax, causing (3) Bax insertion into membranes and (4) oligomerization, culminating in (5) membrane permeabilization. Bcl-XL prevents membrane-bound tBid from binding Bax. Bad releases tBid from Bcl-XL, restoring both tBid binding to Bax and membrane permeabilization.

Abstract To detect cellular activities deep within the body using magnetic resonance platforms, magnetosomes are the ideal model of genetically-encoded nanoparticles. These membrane-bound iron biominerals produced by magnetotactic bacteria are highly regulated by approximately 30 genes; however, only a few magnetosome genes are essential and may constitute the root structure upon which biominerals form. To test this, essential magnetosome genes mamI and mamL were expressed as fluorescent fusion proteins in mammalian cells. Localization and potential protein-protein interaction(s) were investigated using confocal microscopy and fluorescence correlation spectroscopy (FCS). Enhanced green fluorescent protein (EGFP)-MamI and the red fluorescent Tomato-MamL displayed distinct intracellular localization, with net-like and punctate fluorescence, respectively. Remarkably, co-expression revealed co-localization of both fluorescent fusion proteins in the same punctate pattern. An interaction between MamI and MamL was confirmed by co-immunoprecipitation. In addition, changes in EGFP-MamI distribution were accompanied by acquisition of intracellular mobility which all Tomato-MamL structures displayed. Truncation of the MamL C-terminal cationic peptide partially disrupted MamI-MamL colocalization but not mobility. Analysis of extracts from these cells by FCS was consistent with an interaction between fluorescent fusion proteins, including an increase in particle radius. Co-localization and interaction of MamI and MamL demonstrate that these essential magnetosome proteins may have a role in assembly of the magnetosome in any cell type.

ABSTRACT Transcription factors play an essential role in pattern formation during early embryo development, generating a strikingly fast and precise transcriptional response that results in sharp gene expression boundaries. To characterize the steps leading up to transcription, we performed a side-by-side comparison of the nuclear dynamics of two morphogens, a transcriptional activator, Bicoid (Bcd), and a transcriptional repressor, Capicua (Cic), both involved in body patterning along the anterior-posterior axis of the early Drosophila embryo. We used a combination of fluorescence recovery after photobleaching, fluorescence correlation spectroscopy, and single particle tracking to access a wide range of dynamical timescales. Despite their opposite effects on gene transcription, we find that Bcd and Cic have very similar nuclear dynamics, characterized by the co-existence of a freely diffusing monomer population with a number of oligomeric clusters, which range from low stoichiometry and high mobility clusters to larger, DNA-bound hubs. Our observations are consistent with the inclusion of both Bcd and Cic into transcriptional hubs or condensates, while putting constraints on the mechanism by which these form. These results fit in with the recent proposal that many transcription factors might share a common search strategy for target genes regulatory regions that makes use of their large unstructured regions, and may eventually help explain how the transcriptional response they elicit can be at the same time so fast and so precise. SIGNIFICANCE By conducting a comparative study of the nuclear dynamics of Bicoid (a transcriptional activator) and Capicua (a transcriptional repressor) in the Drosophila embryo, we have uncovered a striking similarity in their behaviours. Despite their divergent roles in transcription, both proteins have a propensity to form oligomeric species ranging from highly mobile, low stoichiometry clusters to larger, DNA-bound hubs. Such findings impose new constraints on the existing models of gene regulation by transcription factors, particularly in aspects related to target search and oligomeric binding to gene regulatory regions needed to explain the rapid and precise transcriptional response observed in developmental processes.

Morphogen gradients provide concentration-dependent positional information along polarity axes. Although the dynamics of establishment of these gradients is well described, precision and noise in the downstream activation processes remain elusive. A simple paradigm to address these questions is the Bicoid morphogen gradient that elicits a rapid step-like transcriptional response in young fruit fly embryos. Focusing on the expression of the main Bicoid target, hunchback (hb), at the onset of zygotic transcription, we used the MS2-MCP approach which combines fluorescent labeling of nascent mRNA with live imaging at high spatial and temporal resolution. Removing 36 putative Zelda binding sites unexpectedly present in the original MS2 reporter, we show that the 750 bp of the hb promoter are sufficient to recapitulate endogenous expression at the onset of zygotic transcription. After each mitosis, in the anterior, expression is turned on to rapidly reach a plateau with all nuclei expressing the reporter. Consistent with a Bicoid dose-dependent activation process, the time period required to reach the plateau increases with the distance to the anterior pole. Remarkably, despite the challenge imposed by frequent mitoses and high nuclei-to-nuclei variability in transcription kinetics, it only takes 3 minutes at each interphase for the MS2 reporter loci to measure subtle differences in Bicoid concentration and establish a steadily positioned and steep (Hill coefficient ~ 7) expression boundary. Modeling based on cooperativity between the 6 known Bicoid binding sites in the hb promoter region and assuming rate limiting concentrations of the Bicoid transcription factor at the boundary is able to capture the observed dynamics of pattern establishment but not the steepness of the boundary. This suggests that additional mechanisms are involved in the steepness of the response.

Fly development amazes us by the precision and reproducibility of gene expression, especially since the initial expression patterns are established during very short nuclear cycles. Recent live imaging of hunchback promoter dynamics shows a stable steep binary expression pattern established within the three minute interphase of nuclear cycle 11. Considering expression models of different complexity, we explore the trade-o between the ability of a regulatory system to produce a steep boundary and minimize expression variability between different nuclei. We show how a limited readout time imposed by short developmental cycles affects the gene’s ability to read positional information along the embryo’s anterior posterior axis and express reliably. Comparing our theoretical results to real-time monitoring of the hunchback transcription dynamics in live flies, we discuss possible regulatory strategies, suggesting an important role for additional binding sites, gradients or non-equilibrium binding and modified transcription factor search strategies.

Abstract For over 40 years, the Bicoid-hunchback (Bcd- hb ) system in the fruit fly embryo has been used as the model to study how positional information in morphogen concentration gradients is robustly translated into step-like responses. A body of quantitative comparisons between theory and experiment have since questioned the initial paradigm that the sharp hb transcription pattern emerges solely from diffusive biochemical interactions between the Bicoid transcription factor and the gene promoter region. Several alternative mechanisms have been proposed, such as additional sources of positional information, positive feedback from Hb proteins or out-of-equilibrium transcription activation. By using the MS2-MCP RNA-tagging system and analysing in real time, the transcription dynamics of synthetic reporters for Bicoid and/or its two partners Zelda and Hunchback, we show that all the hb expression pattern features and temporal dynamics are compatible with an equilibrium model with a short decay length Bicoid activity gradient as a sole source of positional information. Meanwhile, Bicoid’s partners speed-up the process by different means: Zelda lowers the Bicoid concentration threshold required for transcriptional activation while Hunchback reduces burstiness and increases the polymerase firing rate.

Transcription factors play an essential role in pattern formation during early embryo development, generating a strikingly fast and precise transcriptional response that results in sharp gene expression boundaries. To characterize the steps leading up to transcription, we performed a side-by-side comparison of the nuclear dynamics of two morphogens, a transcriptional activator, Bicoid (Bcd), and a transcriptional repressor, Capicua (Cic), both involved in body patterning along the anterior-posterior axis of the early Drosophila embryo. We used a combination of fluorescence recovery after photobleaching, fluorescence correlation spectroscopy, and single particle tracking to access a wide range of dynamical timescales. Despite their opposite effects on gene transcription, we find that Bcd and Cic have very similar nuclear dynamics, characterized by the co-existence of a freely diffusing monomer population with a number of oligomeric clusters, which range from low stoichiometry and high mobility clusters to larger, DNA-bound hubs. Our observations are consistent with the inclusion of both Bcd and Cic into transcriptional hubs or condensates, while putting constraints on the mechanism by which these form. These results fit in with the recent proposal that many transcription factors might share a common search strategy for target genes regulatory regions that makes use of their large unstructured regions, and may eventually help explain how the transcriptional response they elicit can be at the same time so fast and so precise.

Abstract Magnetosomes are organelle-like structures within magnetotactic bacteria that store iron biominerals in membrane-bound vesicles. In the bacteria, formation of these structures is highly regulated by approximately 30 genes which are conserved throughout different species. To compartmentalize iron in mammalian cells for magnetic resonance imaging using gene-based contrast, we are introducing key magnetosome proteins. We have previously expressed essential magnetosome genes mamI and mamL as fluorescent fusion proteins in the human melanoma cell line MDA-MB-435 and confirmed their co-localization and interaction. Here we investigate the expression of magnetosome genes mamB and mamE in MDA-MB-435 cells, using confocal fluorescence microscopy to observe expression patterns and to analyze particle mobility. Custom software was developed to characterize fluorescent particle trajectories. In mammalian cells, essential magnetosome proteins displayed different diffusive behaviours. However, all magnetosome proteins travelled at similar velocities when undergoing directed motion, suggesting that MamL, MamL+MamI, MamB, and MamE interact with similar mammalian mobile elements. These results confirm that localization and interaction of essential magnetosome proteins is tenable in the mammalian intracellular compartment.

Using fluorescence correlation spectroscopy (FCS) to distinguish between different types of diffusion processes is often a perilous undertaking, as the analysis of the resulting autocorrelation data is model-dependant. Two recently introduced strategies, however, can help move towards a model-independent interpretation of FCS experiments: 1) the obtention of correlation data at different length-scales and 2) its inversion to retrieve the mean-squared displacement associated with the process under study. We use computer simulations to examine the signature of several biologically relevant diffusion processes (simple diffusion, continuous-time random walk, caged diffusion, obstructed diffusion, two-state diffusion and diffusing diffusivity) in variable-lengthscale FCS. We show that, when used in concert, lengthscale variation and data inversion permit to identify non-Gaussian processes and, regardless of Gaussianity, to retrieve their mean-squared displacement over several orders of magnitude in time. This makes unbiased discrimination between different classes of diffusion models possible.