Abstract Commonly expressed at developmental transitions, microRNAs operate as fine tuners of gene expression to facilitate cell fate acquisition and lineage segregation. Nevertheless, how they might regulate the earliest developmental transitions in early mammalian embryogenesis remains obscure. Here, in a strictly in vivo approach based on novel genetically-engineered mouse models and single-cell RNA sequencing, we identify miR-203 as a critical regulator of timing and cell fate restriction within the totipotency to pluripotency transition in mouse embryos. Genetically engineered mouse models show that loss of miR-203 slows down developmental timing during preimplantation leading to the accumulation of embryos with high expression of totipotency-associated markers, including MERVL endogenous retroviral elements. A new embryonic reporter (eE-Reporter) transgenic mouse carrying MERVL-Tomato and Sox2-GFP transgenes showed that lack of miR-203 leads to sustained expression of MERVL and reduced Sox2 expression in preimplantation developmental stages. A combination of single-cell transcriptional studies and epigenetic analyses identified the central coactivator and histone acetyltransferase P300 as a major miR-203 target at the totipotency to pluripotency transition in vivo. By fine tuning P300 levels, miR-203 carves the epigenetic rewiring process needed for this developmental transition, allowing a timely and correctly paced development.

Introduction Varroa destructor stands as the primary global pest of honey bees, inflicting direct harm on bees while also acting as a vector for a multitude of viruses. Integrated pest management is widely recognized as the optimal strategy for minimizing acaricide application. Designed bottom boards that can limit the growth of the mite population by removing them from the hive and preventing their return and reinfestation of the colony show promising potential. Methods The aim of this study was to compare Varroa population growth by employing three different types of bottom boards. An apiary of 55 colonies was randomly divided into five groups according to the bottom board they had: 1) tubular bottom board, 2) screen bottom board, 3) sticky bottom board, 4) conventional bottom board with a permanent treatment with acaricide (positive control), and 5) conventional bottom board (negative control). Varroa infestation level in bees, colony strength (bee and brood population), and honey reserves were determined between April and December (between autumn and spring in the southern hemisphere). Results Colonies that had sticky bottom boards had approximately 50% less Varroa infestation than colonies with conventional bottom boards at the end of the study. Varroa infestation levels did not differ significantly between the tubular, screen, and conventional bottom boards. Colony strength was similar in all groups. No differences were observed in honey production between colonies from different groups. Discussion The use of sticky bottom boards was the most promising board to limit Varroa population growth and prevent colonies' reinfestation. This result encourages future studies to analyze the incorporation of this strategy in integrated pest management programs.