Abstract Objective In the sanroque mouse model of lupus, pathologic germinal centers (GCs) arise due to increased numbers of follicular helper T (Tfh) cells, resulting in high‐affinity anti–double‐stranded DNA antibodies that cause end‐organ inflammation, such as glomerulonephritis. The purpose of this study was to examine the hypothesis that this pathway could account for a subset of patients with systemic lupus erythematosus (SLE). Methods An expansion of Tfh cells is a causal, and therefore consistent, component of the sanroque mouse phenotype. We validated the enumeration of circulating T cells resembling Tfh cells as a biomarker of this expansion in sanroque mice, and we performed a comprehensive comparison of the surface phenotype of circulating and tonsillar Tfh cells in humans. This circulating biomarker was enumerated in SLE patients (n = 46), Sjögren's syndrome patients (n = 17), and healthy controls (n = 48) and was correlated with disease activity and end‐organ involvement. Results In sanroque mice, circulating Tfh cells increased in proportion to their GC counterparts, making circulating Tfh cells a feasible human biomarker of this novel mechanism of breakdown in GC tolerance. In a subset of SLE patients (14 of 46), but in none of the controls, the levels of circulating Tfh cells (defined as circulating CXCR5+CD4+ cells with high expression of Tfh‐associated molecules, such as inducible T cell costimulator or programmed death 1) were increased. This cellular phenotype did not vary with time, disease activity, or treatment, but it did correlate with the diversity and titers of autoantibodies and with the severity of end‐organ involvement. Conclusion These findings in SLE patients are consistent with the autoimmune mechanism in sanroque mice and identify Tfh effector molecules as possible therapeutic targets in a recognizable subset of patients with SLE.

The transcription factor FOXP3 plays a key role in CD4+CD25+ regulatory T cell function and represents a specific marker for these cells. Despite its strong association with regulatory T cell function, in humans little is known about the frequency of CD4+CD25+ cells that express FOXP3 protein nor the distribution of these cells in vivo. Here we report the characterization of seven anti-FOXP3 monoclonal antibodies enabling the detection of endogenous human FOXP3 protein by flow cytometry and immunohistochemistry. Flow-cytometric analysis showed that FOXP3 was expressed by the majority of CD4+CD25high T cells in peripheral blood. By contrast, less than half of the CD4+CD25int population were FOXP3+, providing an explanation for observations in human T cells that regulatory activity is enriched within the CD4+CD25high pool. Although FOXP3 expression was primarily restricted to CD4+CD25+ cells, it was induced following activation of both CD4+ and CD8+ T cell clones. These findings indicate that the frequency of FOXP3+ cells correlates with the level of expression of CD25 in naturally arising regulatory T cells and that FOXP3 protein is expressed by some activated CD4+ and CD8+ T cell clones. These reagents represent valuable research tools to further investigate FOXP3 function and are applicable for routine clinical use. See accompanying Commentary http://dx.doi.org/10.1002/eji.200526303

Abstract The tumor microenvironment plays an important role in the biologic behavior of follicular lymphoma (FL), but the specific cell subsets involved in this regulation are unknown. To determine the impact of FOXP3-positive regulatory T cells (Tregs) in the progression and outcome of FL patients, we examined samples from 97 patients at diagnosis and 37 at first relapse with an anti-FOXP3 monoclonal antibody. Tregs were quantified using computerized image analysis. The median overall survival (OS) of the series was 9.9 years, and the FL International Prognostic Index (FLIPI) was prognostically significant. The median Treg percentage at diagnosis was 10.5%. Overall, 49 patients had more than 10% Tregs, 30 between 5% to 10%, and 19 less than 5%, with a 5-year OS of 80%, 74%, and 50%, respectively (P = .001). Patients with very low numbers of Tregs (< 5%) presented more frequently with refractory disease (P = .007). The prognostic significance of Treg numbers was independent of the FLIPI. Seven transformed diffuse large B-cell lymphomas (DLBCLs) had lower Treg percentages (mean: 3.3%) than FL grades 1,2 (mean: 12.1%) or 3 (mean: 9%) (P < .02). In conclusion, high Treg numbers predict improved survival of FL patients, while a marked reduction in Tregs is observed on transformation to DLBCL.

Abstract Purpose: Recent studies of Hodgkin's lymphoma (HL) have suggested that the presence of regulatory T cells in the reactive background may explain the inhibition of the antitumoral host immune response observed in these patients. This study aimed to assess the relevance of regulatory T cells and CTLs present in the background of HL samples in the prognosis of a series of classic HL (cHL) patients. Experimental Design: Expression of granzyme B and TIA-1 (markers for CTL) and FOXP3 (a marker for regulatory T cells) were evaluated independently by immunohistochemistry in tissue microarrays of 257 cHL patients and correlated with patient outcome. Results: The combined influence of the presence of FOXP3+ and TIA-1+ cells distinguished three risk groups of patients with 5-year overall survival of 100%, 88%, and 73%. The presence of a small number of FOXP3+ cells and a high proportion of TIA-1+ cells in the infiltrate represent an independent prognostic factor that negatively influenced event-free survival and disease-free survival in cHL. Compared with the features at diagnosis, relapsed samples tended to have more TIA-1+ cells and a lower proportion of FOXP3+ cells in the reactive background. Conclusions: These data suggest that low infiltration of FOXP3+ cells in conjunction with high infiltration of TIA-1+ cells in cHL may represent biological markers predicting an unfavorable outcome. Moreover, the variation of these markers over the course of the disease implies a possible role for them in the progression of HL cases.

Abstract The TNF family member LIGHT (TNFSF14) binds to two receptors, HVEM (TNFSFR14) and LTβR (TNFSFR3). HVEM functions as a costimulatory molecule, whereas LTβR is involved in the development of lymph nodes and ectopic tertiary lymphoid structures at chronic inflammation sites. The classical approach of fusing soluble recombinant proteins to the Fc fragment of IgG resulted in a functionally inactive Ig.mouse (m) LIGHT protein. However, in line with the fact that TNF family members cluster receptors as trimers, addition of a small homotrimeric domain (foldon) N-terminal of mLIGHT produced an active Ig.Foldon-mLIGHT protein able to bind and engage HVEM and LTβR in a reporter cell-based bioassay. In the tumor model of B16.F10 melanoma cells implanted into syngeneic recipients, cells transduced with membrane-bound mLIGHT grew as aggressively as mock-transduced cells, but growth of tumors of B16.F10 cells expressing Ig.Foldon-mLIGHT was delayed and characterized by significant immune cell infiltration. This work unveils the potential of active soluble LIGHT, as a single agent, to recruit cytotoxic cells and dendritic cells at the tumor site to inhibit tumor growth. This effect may be further enhanced with immune checkpoint blockade therapies.

The nucleosome remodeling factor BPTF is required for the deployment of the MYC-driven transcriptional program. Deletion of one