MicroRNAs are a class of small RNAs that are increasingly being recognized as important regulators of gene expression. Although hundreds of microRNAs are present in the mammalian genome, genetic studies addressing their physiological roles are at an early stage. We have shown that mice deficient for bic/microRNA-155 are immunodeficient and display increased lung airway remodeling. We demonstrate a requirement of bic/microRNA-155 for the function of B and T lymphocytes and dendritic cells. Transcriptome analysis of bic/microRNA-155 –deficient CD4 + T cells identified a wide spectrum of microRNA-155–regulated genes, including cytokines, chemokines, and transcription factors. Our work suggests that bic/microRNA-155 plays a key role in the homeostasis and function of the immune system.

Abstract High levels of interleukin 6 (IL 6/B cell stimulatory factor‐2) were detected in synovial fluids from the joints of patients with active rheumatoid arthritis (RA). The cells found in freshly isolated synovial fluid constitutively expressed IL6 mRNA. The synovial tissues obtained by joint biopsy were also found to produce IL6 in vitro. Immunohistochemical analysis demonstrated that CD2 + T cells as well as CD20 + blastoid B cells in the synovial tissues produce IL6. The data indicate that IL6 is generated constitutively in RA and its overproduction may explain the local as well as the generalized symptoms of RA, since IL6 can function as B cell growth and differentiation factor as well as hepatocyte‐stimulating factor.

microRNA-155 (miR-155) is expressed by cells of the immune system after activation and has been shown to be required for antibody production after vaccination with attenuated Salmonella. Here we show the intrinsic requirement for miR-155 in B cell responses to thymus-dependent and -independent antigens. B cells lacking miR-155 generated reduced extrafollicular and germinal center responses and failed to produce high-affinity IgG1 antibodies. Gene-expression profiling of activated B cells indicated that miR-155 regulates an array of genes with diverse function, many of which are predicted targets of miR-155. The transcription factor Pu.1 is validated as a direct target of miR155-mediated inhibition. When Pu.1 is overexpressed in wild-type B cells, fewer IgG1 cells are produced, indicating that loss of Pu.1 regulation is a contributing factor to the miR-155-deficient phenotype. Our results implicate post-transcriptional regulation of gene expression for establishing the terminal differentiation program of B cells.

Receptors on macrophages for the Fc region of IgG (FcγR) mediate a number of responses important for host immunity. Signaling events necessary for these responses are likely initiated by the activation of Src-family and Syk-family tyrosine kinases after FcγR cross-linking. Macrophages derived from Syk-deficient (Syk−) mice were defective in phagocytosis of particles bound by FcγRs, as well as in many FcγR-induced signaling events, including tyrosine phosphorylation of a number of cellular substrates and activation of MAP kinases. In contrast, Syk− macrophages exhibited normal responses to another potent macrophage stimulus, lipopolysaccharide. Phagocytosis of latex beads and Escherichia coli bacteria was also not affected. Syk− macrophages exhibited formation of polymerized actin structures opposing particles bound to the cells by FcγRs (actin cups), but failed to proceed to internalization. Interestingly, inhibitors of phosphatidylinositol 3-kinase also blocked FcγR-mediated phagocytosis at this stage. Thus, PI 3-kinase may participate in a Syk-dependent signaling pathway critical for FcγR-mediated phagocytosis. Macrophages derived from mice deficient for the three members of the Src-family of kinases expressed in these cells, Hck, Fgr, and Lyn, exhibited poor Syk activation upon FcγR engagement, accompanied by a delay in FcγR-mediated phagocytosis. These observations demonstrate that Syk is critical for FcγR-mediated phagocytosis, as well as for signal transduction in macrophages. Additionally, our findings provide evidence to support a model of sequential tyrosine kinase activation by FcγR's analogous to models of signaling by the B and T cell antigen receptors.

Article1 May 1997free access The Fc receptor γ-chain and the tyrosine kinase Syk are essential for activation of mouse platelets by collagen A. Poole A. PooleA.Poole, J.M.Gibbins and M.Turner contributed equally to this work Search for more papers by this author J.M. Gibbins J.M. Gibbins Department of Pharmacology, University of Oxford, Mansfield Road, Oxford, OX1 3QT UKA.Poole, J.M.Gibbins and M.Turner contributed equally to this work Search for more papers by this author M. Turner M. Turner National Institute for Medical Research, The Ridgeway, Mill Hill, London, NW7 1AA UKA.Poole, J.M.Gibbins and M.Turner contributed equally to this work Search for more papers by this author M.J. van Vugt M.J. van Vugt Deparment of Immunology, University Hospital Utrecht, PO Box 85.500, NL-3508 GA Utrecht, The Netherlands Search for more papers by this author J.G.J. van de Winkel J.G.J. van de Winkel Deparment of Immunology, University Hospital Utrecht, PO Box 85.500, NL-3508 GA Utrecht, The Netherlands Search for more papers by this author T. Saito T. Saito Division of Molecular Genetics, Center for Biomedical Science, Chiba University School of Medicine, 1-8-1 Inohana, Chuo-ku, Chiba, 260 Japan Search for more papers by this author V.L.J. Tybulewicz V.L.J. Tybulewicz National Institute for Medical Research, The Ridgeway, Mill Hill, London, NW7 1AA UK Search for more papers by this author S.P. Watson Corresponding Author S.P. Watson Department of Pharmacology, University of Oxford, Mansfield Road, Oxford, OX1 3QT UK Search for more papers by this author A. Poole A. PooleA.Poole, J.M.Gibbins and M.Turner contributed equally to this work Search for more papers by this author J.M. Gibbins J.M. Gibbins Department of Pharmacology, University of Oxford, Mansfield Road, Oxford, OX1 3QT UKA.Poole, J.M.Gibbins and M.Turner contributed equally to this work Search for more papers by this author M. Turner M. Turner National Institute for Medical Research, The Ridgeway, Mill Hill, London, NW7 1AA UKA.Poole, J.M.Gibbins and M.Turner contributed equally to this work Search for more papers by this author M.J. van Vugt M.J. van Vugt Deparment of Immunology, University Hospital Utrecht, PO Box 85.500, NL-3508 GA Utrecht, The Netherlands Search for more papers by this author J.G.J. van de Winkel J.G.J. van de Winkel Deparment of Immunology, University Hospital Utrecht, PO Box 85.500, NL-3508 GA Utrecht, The Netherlands Search for more papers by this author T. Saito T. Saito Division of Molecular Genetics, Center for Biomedical Science, Chiba University School of Medicine, 1-8-1 Inohana, Chuo-ku, Chiba, 260 Japan Search for more papers by this author V.L.J. Tybulewicz V.L.J. Tybulewicz National Institute for Medical Research, The Ridgeway, Mill Hill, London, NW7 1AA UK Search for more papers by this author S.P. Watson Corresponding Author S.P. Watson Department of Pharmacology, University of Oxford, Mansfield Road, Oxford, OX1 3QT UK Search for more papers by this author Author Information A. Poole2, J.M. Gibbins1, M. Turner3, M.J. van Vugt4, J.G.J. van de Winkel4, T. Saito5, V.L.J. Tybulewicz3 and S.P. Watson 1 1Department of Pharmacology, University of Oxford, Mansfield Road, Oxford, OX1 3QT UK 2Department of Pharmacology, University of Bristol,School of Medical Sciences, University Walk, Clifton, Bristol, BS8 1TD UK 3National Institute for Medical Research, The Ridgeway, Mill Hill, London, NW7 1AA UK 4Deparment of Immunology, University Hospital Utrecht, PO Box 85.500, NL-3508 GA Utrecht, The Netherlands 5Division of Molecular Genetics, Center for Biomedical Science, Chiba University School of Medicine, 1-8-1 Inohana, Chuo-ku, Chiba, 260 Japan The EMBO Journal (1997)16:2333-2341https://doi.org/10.1093/emboj/16.9.2333 PDFDownload PDF of article text and main figures. ToolsAdd to favoritesDownload CitationsTrack CitationsPermissions ShareFacebookTwitterLinked InMendeleyWechatReddit Figures & Info Activation of mouse platelets by collagen is associated with tyrosine phosphorylation of multiple proteins including the Fc receptor γ-chain, the tyrosine kinase Syk and phospholipase Cγ2, suggesting that collagen signals in a manner similar to that of immune receptors. This hypothesis has been tested using platelets from mice lacking the Fc receptor γ-chain or Syk. Tyrosine phosphorylation of Syk and phospholipase Cγ2 by collagen stimulation is absent in mice lacking the Fc receptor γ-chain. Tyrosine phosphorylation of phospholipase Cγ2 by collagen stimulation is also absent in mice platelets which lack Syk, although phosphorylation of the Fc receptor γ-chain is maintained. In contrast, tyrosine phosphorylation of platelet proteins by the G protein-coupled receptor agonist thrombin is maintained in mouse platelets deficient in Fc receptor γ-chain or Syk. The absence of Fc receptor γ-chain or Syk is accompanied by a loss of secretion and aggregation responses in collagen- but not thrombin-stimulated platelets. These observations provide the first direct evidence of an essential role for the immunoreceptor tyrosine-based activation motif (ITAM) in signalling by a non-immune receptor stimulus. Introduction Collagen is an abundant extracellular matrix protein present in blood vessel subendothelium. Upon damage to the endothelial lining, platelets adhere to collagen fibres and undergo activation through a tyrosine kinase-dependent mechanism leading to secretion of granule contents and platelet aggregation. The molecular mechanism underlying these activation events by collagen is not established, with several platelet surface glycoproteins implicated as collagen receptors, including the integrin α2β1 (Santoro et al., 1988), glycoprotein IV (GPIIIb, CD36) (Tandon et al., 1989), glycoprotein VI (Ryo et al., 1992) and uncharacterized 65 (Chiang and Kang, 1982) and 85–90 kDa glycoproteins (Deckmyn et al., 1992). Patients with defects in expression of these proteins, or who possess autoantibodies to them, display mild bleeding disorders (Moroi et al., 1989; Deckmyn et al., 1992; Ryo et al., 1992; Kehrel et al., 1993; Daniel et al., 1994b; McKeown et al., 1994). Collagen induces phosphorylation of multiple platelet proteins on tyrosine, including the Fc receptor γ-chain (FcR γ-chain), the non-receptor tyrosine kinase Syk and phospholipase Cγ2 (PLCγ2) (Blake et al., 1994; Daniel et al., 1994a; Fujii et al., 1994; Yanaga et al., 1995; Asazuma et al., 1996; Gibbins et al., 1996). Syk assembles into signalling complexes at the plasma membrane via interaction between its tandem Src homology 2 (SH2) domains and a tyrosine-phosphorylated immunoreceptor tyrosine-based activation motif (ITAM). We recently proposed a model for collagen-induced signalling in human platelets in which receptor clustering induced by collagen leads to tyrosine phosphorylation of the FcR γ-chain, possibly by a Src family kinase, allowing binding of Syk, which becomes tyrosine phosphorylated and activated (Gibbins et al., 1996). This initiates a series of events which may involve other kinases and adapter proteins leading to tyrosine phosphorylation and activation of PLCγ2. This model has been evaluated in the present study using platelets from genetically modified mice which lack the FcR γ-chain or Syk. Results Tyrosine phosphorylation in collagen- and thrombin-stimulated platelets Collagen and thrombin stimulated distinct but overlapping increases in whole cell tyrosine phosphorylation in platelets (Figures 1 and 2A). Both agonists stimulated increases in tyrosine phosphorylation of proteins of ∼42, 70–75, 100, 110 and 130 kDa in platelets from B6 mice; the 42 and 110 kDa proteins were more heavily phosphorylated in thrombin-stimulated cells. The largest increase in tyrosine phosphorylation was in the 70–75 kDa proteins. Collagen but not thrombin also stimulated marked tyrosine phosphorylation of a 36 kDa protein. A candidate protein for this is p36-38 which is tyrosine phosphorylated in collagen-stimulated human platelets and associates with the SH2 domains of Grb2 and PLCγ1 (Robinson et al., 1996). Figure 1.Absence of tyrosine phosphorylation of Syk and PLCγ2 in collagen-stimulated platelets which lack the FcR γ-chain. Platelets prepared from control B6 and FcR γ-chain-deficient mice were stimulated with collagen (10 or 60 μg/ml for 120 s) or thrombin (1 or 10 U/ml for 60 s). For whole cell lysates (A), stimulation was terminated by addition of Laemmli sample treatment buffer and samples immunoblotted for phosphotyrosine residues. Tyrosine-phosphorylated bands corresponding to Syk (72 kDa), PLCγ2 (140–150 kDa) and the FcR γ-chain (14 kDa) cannot be resolved from other tyrosine-phosphorylated proteins in whole cell lysates or are absent. For immunoprecipitations of Syk (B) and PLCγ2 (C), stimulation was terminated by addition of NP-40 lysis buffer and precipitated proteins were immunoblotted for phosphotyrosine residues (upper immunoblot in each panel). Immunoprecipitations were verified by reprobing for the relevant protein [lower immunoblot of (B) and (C)]. Results are representative of two FcR γ-chain −/− mutants and two control mice. Download figure Download PowerPoint Figure 2.Tyrosine phosphorylation of PLCγ2 is absent in collagen-stimulated platelets which lack Syk, but phosphorylation of the FcR γ-chain is maintained. Platelets were prepared from either control Syk-deficient or control radiation chimeric mice (A, B and C) or from Syk-deficient mutant mice or control 129/Sv mice (D). (A) Whole cell lysates were prepared from platelets stimulated with collagen (60 μg/ml for 120 s) by addition of reducing Laemmli sample treatment buffer. Samples were separated by SDS–PAGE on 10–18% gradient slab gels and immunoblotted for phosphotyrosine (i) and subsequently for Syk (ii). (B) PLCγ2 was immunoprecipitated from NP-40-solubilized extracts of platelets stimulated with collagen (60 μg/ml for 120 s). Proteins were separated by SDS–PAGE on 10–18% gradient slab gels and immunoblotted for phosphotyrosine (i) and for PLCγ2 (ii). (C) FcR γ-chain from NP-40-solubilized extracts of platelets stimulated with collagen (60 μg/ml for 120 s) was precipitated with a GST fusion protein containing the tandem SH2 domains of Syk. Precipitated proteins were separated by SDS–PAGE under non-reducing conditions and immunoblotted for phosphotyrosine (i) and for FcR γ-chain (ii). Under these conditions, the FcR γ-chain appears as a doublet of between 22 and 25 kDa apparent molecular weight. The protein detected in (ii) corresponds to the upper tyrosine-phosphorylated band in (i). (D) Whole cell lysates were prepared from platelets stimulated with collagen (10 μg/ml for 120 s) or thrombin (10 U/ml for 60 s) by addition of reducing Laemmli sample treatment buffer. Samples were separated by SDS–PAGE on 10–18% gradient slab gels and immunoblotted for phosphotyrosine (i) and subsequently for Syk (ii), the latter to confirm the absence of the kinase. Results are representative of four Syk-deficient radiation chimeric mice (A, B and C) and four Syk-deficient mutant mice (D). Download figure Download PowerPoint The concentration–response curve for the increase in tyrosine phosphorylation in response to collagen occurred over a similar range (3–100 μg/ml) to that in human platelets (not shown). For the purpose of studies in which tissue was limiting, 10 and 60 μg/ml were chosen to represent low and high concentrations of collagen, respectively. Thrombin stimulated tyrosine phosphorylation at a threshold of 1 U/ml and produced a maximal effect at 10 U/ml. The relative insensitivity to thrombin compared with human platelets is consistent with a novel receptor as demonstrated in mutant mice lacking the 'classical' thrombin receptor (Connolly et al., 1996). Thrombin stimulated a rapid onset of tyrosine phosphorylation which was detectable within 5 s of stimulation. In contrast, the response to collagen is delayed by ∼15 s, as with human platelets. The increase in phosphorylation was maintained for up to 300 s for both agonists (not shown). Antibodies and a GST fusion protein were used to precipitate and identify specific proteins which undergo tyrosine phosphorylation. Collagen stimulated tyrosine phosphorylation of Syk and PLCγ2, with marked phosphorylation observed at 60 μg/ml (Figures 1 and 2B). No tyrosine-phosphorylated proteins co-immunoprecipitated with PLCγ2. An unidentified tyrosine-phosphorylated protein of 80 kDa co-immunoprecipitated (not shown) with Syk, which may be the same protein as that seen in human platelets in Syk immunoprecipitates (Asselin et al., 1997). Thrombin also stimulated tyrosine phosphorylation of Syk and PLCγ2, although to a much lesser extent, with phosphorylation of PLCγ2 being particularly weak (Figure 1). Collagen stimulated tyrosine phosphorylation of the FcR γ-chain (Figure 2C) which was precipitated by association with the GST fusion protein of the tandem SH2 domains of Syk. These results agree with previous observations in human platelets (Blake et al., 1994; Daniel et al., 1994a; Fujii et al., 1994; Yanaga et al., 1995; Asazuma et al., 1996; Gibbins et al., 1996). Collagen-stimulated tyrosine phosphorylation of Syk and PLCγ2 is absent in platelets lacking the FcR γ-chain Collagen did not stimulate an increase in whole cell tyrosine phosphorylation in platelets from mutant mice lacking the FcR γ-chain (Figure 1). Immunoprecipitation of Syk and PLCγ2 demonstrated that tyrosine phosphorylation of these proteins in response to collagen was almost completely absent in FcR γ-chain-deficient platelets (Figure 1). The small increase in phosphorylation of both proteins observed was reproducible, suggesting the existence of an alternative pathway of collagen receptor signalling independent of the FcR γ-chain. The relatively small increase in tyrosine phosphorylation induced by thrombin (10 U/ml) in FcR γ-chain-deficient mice was comparable with that in control animals, demonstrating that the FcR γ-chain is not essential for phosphorylation of Syk and PLCγ2 by the G protein receptor-coupled agonist. Collagen-stimulated tyrosine phosphorylation of FcR γ-chain, but not PLCγ2, in Syk-deficient platelets As reported previously, the survival rate of Syk-deficient mutant mice to adulthood is extremely low (Cheng et al., 1995; Turner et al., 1995). Four Syk-deficient animals on an outbred genetic background survived to adulthood and were used for experimentation. None of the four animals exhibited an increase in whole cell tyrosine phosphorylation in response to collagen (Figure 2D). In contrast, thrombin stimulated a similar pattern of tyrosine phosphorylation to that in control cells, possibly with a small reduction in the 72 kDa region, the position of Syk (Figure 2D and data not shown). In order to extend these findings, further experiments were performed using radiation chimeric animals which had been reconstituted with fetal liver lacking Syk; confirmation of successful reconstitution was obtained by immunoblotting for Syk [Figure 2A(ii)]. As found in platelets from Syk −/− mutants, collagen also failed to stimulate tyrosine phosphorylation in chimeric Syk-deficient animals [Figure 2A(i)]. We have shown previously in human platelets that only a small proportion of total cellular FcR γ-chain becomes tyrosine phosphorylated on collagen stimulation and, consequently, it is difficult to detect on anti-phosphotyrosine immunoblots of whole cell lysates (Gibbins et al., 1996). This was also the case with mouse platelets, although overexposure of immunoblots from collagen-stimulated platelets allowed detection of an increase in tyrosine phosphorylation of a protein of 10–14 kDa under reducing conditions and at ∼25 kDa under non-reducing conditions, the expected position of the FcR γ-chain under the respective conditions. Tyrosine phosphorylation of the FcR γ-chain was investigated by precipitation with a GST fusion protein containing the tandem SH2 domains of Syk, followed by immunoblotting (Figure 2C). Collagen stimulated tyrosine phosphorylation of the FcR γ-chain in Syk-deficient mice, with the relative increase in tyrosine phosphorylation over basal being similar to that in platelets from control mice; however, the absolute level of tyrosine phosphorylation of the FcR γ-chain in the control and stimulated samples was lower than that in control mice [Figure 2C(i)] despite a similar level of expression of the FcR γ-chain [Figure 2C(ii)]. These data demonstrate that tyrosine phosphorylation of the FcR γ-chain in collagen-stimulated platelets is independent of Syk. The lower level of tyrosine phosphorylation of the FcR γ-chain in control and stimulated samples could be due to a protective action of Syk against dephosphorylation mediated through binding of its tandem SH2 domain to the phosphotyrosine residues in the ITAM of the FcR γ-chain. Tyrosine phosphorylation of PLCγ2 induced by collagen was absent in Syk-deficient animals, suggesting that its phosphorylation occurs downstream of Syk (Figure 2B). Release of 5-HT following collagen stimulation is absent in platelets deficient in FcR γ-chain or Syk, whereas the response to thrombin is maintained Collagen stimulated the release of [3H]5-hydroxytryptamine (5-HT) over the same concentration range as that for whole cell tyrosine phosphorylation (3–100 μg/ml), with maximal release occurring at 100 μg/ml (49.9 ± 6.6% of tissue [3H]5-HT content, n = 4, 129/Sv mice). Thrombin also stimulated release over the same concentration range as that for tyrosine phosphorylation, with a threshold at 1 U/ml and maximal release at 10 U/ml (73.6 ± 2.4% of tissue [3H]5-HT content, n = 4, 129/Sv mice). Stimulation of [3H]5-HT release by collagen (60 μg/ml) was inhibited completely in mutants deficient in FcR γ-chain or Syk relative to litter-matched controls (Figure 3). The response to collagen (60 μg/ml) is also inhibited completely in chimeric Syk-deficient mice (−2.1 ± 0.8% of tissue [3H]5-HT content, n = 4). The response to collagen (10 and 60 μg/ml) in mice heterozygous for Syk (+/−) was ∼50% of that in controls (not shown). In contrast, the response to thrombin (10 U/ml) was not altered in mutants deficient in FcR γ-chain or Syk (Figure 3). Figure 3.Release of 5-HT from platelets stimulated with collagen is absent in mice deficient in FcR γ-chain or Syk, but the response to thrombin is maintained. (A) Platelets were prepared from control mice (□) and FcR γ-chain-deficient mutant mice (▪), loaded with [3H]5-HT and stimulated with either collagen (60 μg/ml for 120 s) or thrombin (10 U/ml for 60 s). Stimulation was terminated by centrifugation and the amount of [3H]5-HT released into the supernatant measured by scintillation spectrometry. [3H]5-HT release is expressed as a percentage of total tissue content (basal release = 0%). Results represent mean ± SE from three FcR γ-chain-deficient mutants and three control mice. (B) Platelets were prepared from control mice (□) and from Syk-deficient mutant mice (▪), loaded with [3H]5-HT and stimulated with either collagen (60 μg/ml for 120 s) or thrombin (10 U/ml for 60 s). Stimulation was terminated by centrifugation to pellet platelets, and the amount of [3H]5-HT released into the supernatant was measured by scintillation spectrometry. [3H]5-HT release is expressed as a percentage of total tissue content (basal release = 0%). Results represent mean ± SE from Syk-deficient mutants and control mice. Download figure Download PowerPoint Aggregation and release of arachidonic acid in response to collagen are absent in platelets deficient in Syk, whereas responses to thrombin are maintained The above data are consistent with an essential role for the FcR γ-chain and Syk in collagen receptor signalling in platelets. The functional significance of the increase in tyrosine phosphorylation of Syk in thrombin-stimulated platelets, however, is not clear. The role of Syk in receptor signalling by collagen and thrombin was therefore extended to further functional responses, namely aggregation, adhesion and release of arachidonic acid, in chimeric Syk-deficient animals. Aggregation was assessed by the reduction in single platelet number. This requires less tissue than methods that measure changes in optical density such as Born aggregometry, and is highly sensitive as it detects formation of microaggregates. Studies of aggregation induced by collagen, however, are complicated by the decrease in platelet count which occurs as a result of adhesion to the extracellular matrix protein. This is illustrated by the use of the fibrinogen receptor antagonist Arg–Gly–Asp–Ser (RGDS) which prevents platelet aggregation. Collagen (60 μg/ml) reduces the platelet count to 9.5 ± 4.1% (n = 3) of non-stimulated samples, while this is increased to 27 ± 2.0% (n = 3) in the presence of RGDS (Figure 4A). The reduction in platelet count in the presence of RGDS reflects adhesion, while the difference between the two values is due to aggregation. This is illustrated further by the use of a collagen-related peptide (CRP) which supports a much lower level of platelet adhesion than that by collagen as it does not bind to the integrin α2β1 (Morton et al., 1995). CRP stimulates a marked decrease in platelet count in the absence of RGDS, but induces a much lower decrease in platelet count in its presence (Figure 4B). Figure 4.Collagen- and CRP-induced platelet aggregation, but not adhesion, is reduced in platelets which lack Syk. Platelets were prepared from control and Syk-deficient radiation chimeric mice and stimulated with (A) collagen (60 μg/ml for 120 s) or (B) CRP (3 μg/ml for 120 s) and in the absence (□) or presence (▪) of the tetrapeptide RGDS (1 mM). Aggregation was halted by addition of glutaraldehyde (see Materials and methods) and the level of aggregation determined by measuring the reduction in single platelets in suspension. The platelet count in stimulated samples is expressed as a percentage of the platelet count in unstimulated samples. Results represent mean ± SE from four Syk-deficient radiation chimeric mice and three control mice. Download figure Download PowerPoint The reduction in single platelet count induced by collagen or CRP in the Syk-deficient chimeric mice is not significantly different from that in control mice in the presence of RGDS (Figure 4), consistent with a lack of aggregation. Further, the response to collagen or CRP is not altered by addition of RGDS in the Syk-deficient chimeric mice, confirming the lack of aggregation (Figure 4). In contrast, the reduction in single platelet count by thrombin (10 U/ml) was not altered significantly in the Syk-deficient chimeric mice. Thrombin decreased the platelet count to 4.6 ± 2.3% and 10.7 ± 4.7% in control (n = 3) and chimeric mice (n = 4), respectively. Collagen (3–100 μg/ml) and thrombin (1–10 U/ml) induce release of [3H]arachidonic acid from platelets over the same concentration range as that for stimulation of tyrosine phosphorylation. Collagen induced a greater release than thrombin in control mice. Release of [3H]arachidonic acid by collagen was completely inhibited in the Syk-deficient chimeric mice whereas, once again, the response to thrombin was not altered (Figure 5). Figure 5.Release of arachidonic acid in response to collagen stimulation is reduced in platelets which lack Syk, but their response to thrombin stimulation is maintained. Platelets were prepared from control mice and from Syk-deficient radiation chimeric mice and loaded with [3H]arachidonic acid. Samples were stimulated with collagen (60 μg/ml for 120 s) or thrombin (10 U/ml for 60 s). Stimulation was terminated by centrifugation to pellet platelets, and the amount of [3H]arachidonic acid released into the supernatant was measured by scintillation spectrometry. [3H]Arachidonic acid release is expressed as a percentage of total tissue content (basal release = 0%). Results represent mean ± SE from four Syk-deficient radiation chimeric mice (▪) and three control mice (□). Download figure Download PowerPoint Platelet number and bleeding times In view of the critical role of Syk in B-cell development (Cheng et al., 1995; Turner et al., 1995), it was of interest to investigate whether Syk has a role in platelet formation. The platelet count was comparable in control (1.01 ± 0.14×108/ml; n = 5) and chimeric Syk-deficient mice (1.22 ± 0.11×108/ml; n = 4), and also in Syk-deficient mutants (not shown). The platelet number was also similar in FcR γ-chain-deficient mutants (1.50 ± 0.12×108/ml; n = 3) relative to controls (1.50 ± 0.33×108/ml; n = 3). Bleeding times were not significantly different between control (155 ± 15 s; n = 4) and chimeric Syk-deficient mice (184 ± 61 s; n = 4). Discussion There is mounting evidence in support of the two-step, two-site model of collagen signalling in human platelets (Morton et al., 1989, 1995; Santoro et al., 1991). The initial interaction of collagen fibres with the platelet surface is mediated through the integrin α2β1, an Mg2+-dependent process (Santoro et al., 1988). This is believed to facilitate interaction of collagen with an uncharacterized low-affinity signal-transducing receptor coupled to the FcR γ-chain. Phosphorylation of the FcR γ-chain on its ITAM tyrosine residues and its association with Syk leads to tyrosine phosphorylation and activation of PLCγ2, possibly via adapter proteins and additional tyrosine kinases. Binding of collagen to the integrin α2β1 is not essential for stimulation; collagen induces tyrosine phosphorylation of the FcR γ-chain, Syk and PLCγ2 in the absence of Mg2+ or in the presence of antibodies to the integrin, albeit to a lower level (Gibbins et al., 1996; Asselin et al., 1997). CRP, a synthetic peptide based on the triple-helical structure of collagen, also stimulates phosphorylation of these three proteins but does not support adhesion to α2β1 (Gibbins et al., 1996; Asselin et al., 1997). The roles of the FcR γ-chain and Syk in collagen signalling have been tested in the present study using platelets from genetically modified mice. It is not possible to perform similar studies on human platelets because of the lack of a nucleus and the absence of established procedures for platelet formation in vitro. Mouse platelets respond in a similar manner to human platelets when stimulated with collagen, but are less sensitive to thrombin. As in human platelets, collagen induces tyrosine phosphorylation of multiple platelet proteins including the FcR γ-chain, Syk and PLCγ2. These proteins are phosphorylated to a much smaller extent, or not at all, in thrombin-stimulated platelets. Whole cell protein tyrosine phosphorylation induced by collagen is abrogated in platelets lacking the FcR γ-chain and Syk, whereas the response to thrombin is similar to that in control platelets. In particular, tyrosine phosphorylation of PLCγ2 induced by collagen is blocked in mice lacking either protein. Tyrosine phosphorylation of Syk is also absent in mice lacking the FcR γ-chain, whereas tyrosine phosphorylation of the FcR γ-chain is maintained in mice lacking Syk. These results place tyrosine phosphorylation of Syk downstream of the FcR γ-chain and tyrosine phosphorylation of PLCγ2 downstream of both the FcR γ-chain and Syk, consistent with the above model. This sequence is the same as that established previously for signalling by immune receptors. For example, tyrosine phosphorylation of the FcR γ-chain by cross-linking of the mast FcϵRI receptor is mediated upstream of the tyrosine kinase Syk and is essential for mast cell activation (Jouvin et al., 1994; Oliver et al., 1994; Costello et al., 1997). It is likely that this pathway is also important in the activation of human platelets by collagen. Okuma's group has identified an individual deficient in glycoprotein VI, a candidate collagen receptor, whose platelets do not undergo aggregation or exhibit increased tyrosine phosphorylation of Syk in response to collagen whereas activation of c-src is maintained (Ichinohe et al., 1997). Glycoprotein VI also co-immunoprecipitates with the FcR γ-chain, providing evidence for their association in vivo (J.M.Gibbins, M.Okuma and S.P.Watson, unpublished). These observations suggest a pathway of platelet activation by collagen mediated through glycoprotein VI, the FcR γ-chain and the tyrosine kinase Syk. The FcR γ-chain also associates with FcγRI, FcγRIII and FcϵRI, and is required for their cell surface expression (Takai et al., 1994; van Vugt et al., 1996). It may have a similar role in the regulation of the expression of the collagen receptor. This could not be tested in the present study because of the absence of antibodies which recognize glycoprotein VI in the mouse. Tyrosine phosphorylation of PLCγ2 by collagen is believed to be essential for phosphoinositide hydrolysis and the onset of secretion and aggregation responses. Consistent with this, collagen-induced dense granule secretion, measured by release of [3H]5-HT, is absent in mice deficient in the FcR γ-chain and Syk whereas the response to thrombin is not altered. The release of arachidonic acid and onset of aggregation induced by collagen were also inhibited in mice deficient in Syk (not studied for the FcR γ-chain-deficient mice). Adhesion of platelets to collagen fibres is not altered in the chimeric Syk-deficient mice, demonstrating independence from the tyrosine kinase. Activation-independent adhesion to collagen via α2β1 has been described in human platelets (Morton et al., 1994). Role of FcR γ-chain and Syk in thrombin-stimulated platelets Tyrosine phosphorylation of Syk in

The kinase PI(3)Kδ is shown to be required for the immunosuppressive function of regulatory T cells; inactivation of PI(3)Kδ in these cells leads to enhanced cytotoxic T-cell function and restricts tumour growth and metastasis in a variety of mouse tumour models. This paper shows that the p110δ isoform of phosphoinositide-3-OH kinase (PI(3)K) is critically required for the immunosuppressive function of regulatory T (Treg) cells. Inactivation of p110δ in Treg cells leads to enhanced cytotoxic T-cell function and restricts tumour growth and metastasis in a variety of mouse tumour models. This finding identifies p110δ as a druggable kinase target for which inhibition boosts the cancer-suppressive potential of the immune system. Inhibitors against the p110δ isoform of phosphoinositide-3-OH kinase (PI(3)K) have shown remarkable therapeutic efficacy in some human leukaemias1,2. As p110δ is primarily expressed in leukocytes3, drugs against p110δ have not been considered for the treatment of solid tumours4. Here we report that p110δ inactivation in mice protects against a broad range of cancers, including non-haematological solid tumours. We demonstrate that p110δ inactivation in regulatory T cells unleashes CD8+ cytotoxic T cells and induces tumour regression. Thus, p110δ inhibitors can break tumour-induced immune tolerance and should be considered for wider use in oncology.

Mice lacking the p110δ catalytic subunit of phosphatidylinositol 3-kinase have reduced numbers of B1 and marginal zone B cells, reduced levels of serum immunoglobulins, respond poorly to immunization with type II thymus-independent antigen, and are defective in their primary and secondary responses to thymus-dependent antigen. p110δ−/− B cells proliferate poorly in response to B cell receptor (BCR) or CD40 signals in vitro, fail to activate protein kinase B, and are prone to apoptosis. p110δ function is required for BCR-mediated calcium flux, activation of phosphlipaseCγ2, and Bruton's tyrosine kinase. Thus, p110δ plays a critical role in B cell homeostasis and function.

Foxp3 is a transcription factor that is essential for the normal development of regulatory T cells (Tregs). In the absence of microRNAs (miRNAs), Foxp3(+) Tregs develop but fail to maintain immune homeostasis, leading to a scurfy-like disease. Global analysis of the network of genes regulated by Foxp3 has identified the miRNA miR-155, which is highly expressed in Tregs, as a direct target of Foxp3. In this study we report that miR-155-deficient mice have reduced numbers of Tregs, both in the thymus and periphery, due to impaired development. However, we found no evidence for defective suppressor activity of miR-155-deficient Tregs, either in vitro or in vivo. Our results indicate that miR-155 contributes to Treg development, but that additional miRNAs control Treg function.