Fusarium species, particularly Fusarium graminearum and F. culmorum, are the main cause of trichothecene type B contamination in cereals. Data on the distribution of Fusarium trichothecene genotypes in cereals in Europe are scattered in time and space. Furthermore, a common core set of related variables (sampling method, host cultivar, previous crop, etc.) that would allow more effective analysis of factors influencing the spatial and temporal population distribution, is lacking. Consequently, based on the available data, it is difficult to identify factors influencing chemotype distribution and spread at the European level. Here we describe the results of a collaborative integrated work which aims 1) to characterize the trichothecene genotypes of strains from three Fusarium species, collected over the period 2000-2013, and 2) to enhance the standardization of epidemiological data collection. Information on host plant, country of origin, sampling location, year of sampling and previous crop of 1147 F. graminearum, 479 F. culmorum and 3 F. cortaderiae strains obtained from 17 European countries was compiled and a map of trichothecene type B genotype distribution was plotted for each species. All information on the strains was collected in a freely accessible and updatable database (www.catalogueeu.luxmcc.lu), which will serve as a starting point for epidemiological analysis of potential spatial and temporal trichothecene genotype shifts in Europe. The analysis of the currently available European dataset showed that in F. graminearum, the predominant genotype was 15-acetyldeoxynivalenol (15-ADON) (82.9%), followed by 3-acetyldeoxynivalenol (3-ADON) (13.6%) and nivalenol (NIV) (3.5%). In F. culmorum, the prevalent genotype was 3-ADON (59.9%), while the NIV genotype accounted for the remaining 40.1%. Both geographical and temporal patterns of trichothecene genotypes distribution were identified.

Abstract In May–June 2019, the microalga Chrysochromulina leadbeateri caused a massive fish-killing event in several fjords in Northern Norway, resulting in the largest direct impact ever on aquaculture in northern Europe due to toxic algae. Motivated by the fact that no algal toxins have previously been described from C. leadbeateri , we set out to investigate the chemical nature and toxicity of secondary metabolites in extracts of two strains (UIO 393, UIO 394) isolated from the 2019 bloom, as well as one older strain (UIO 035) isolated during a bloom in Northern Norway in 1991. Initial LC–DAD–MS/MS-based molecular networking analysis of the crude MeOH extracts of the cultivated strains showed that their profiles of small organic molecules, including a large number of known lipids, were very similar, suggesting that the same class of toxin(s) were likely the causative agents of the two harmful algal bloom (HAB) events. Next, bioassay-guided fractionation using the RTgill-W1 cell line and metabolomics analysis pointed to a major compound affording [M+H] + ions at m / z 1399.8333 as a possible toxin, corresponding to a compound with the formula C 67 H 127 ClO 27 . Moreover, our study unveiled a series of minor analogues exhibiting distinct patterns of chlorination and sulfation, together defining a new family of compounds, which we propose to name leadbeaterins. Remarkably, these suspected toxins were detected in situ in samples collected during the 2019 bloom close to Tromsø, thereby substantiating their likely role in fish kills. The elemental compositions of the putative C. leadbeateri ichthyotoxins strongly indicate them to be long linear polyhydroxylated polyketides, structurally similar to sterolysins, reported from a number of dinoflagellates.

The tobacco alkaloid nicotine is known for its activation of neuronal nicotinic acetylcholine receptors. Nicotine is consumed in different ways such as through conventional smoking, e-cigarettes, snuff or nicotine pouches. The use of snuff has been associated with several adverse health effects, such as inflammatory reactions of the oral mucosa and oral cavity cancer. We performed a metabolomic analysis of nicotine-exposed THP-1 human monocytes. Cells were exposed to 5 mM of the alkaloid for up to 4 h, and cell extracts and medium subjected to untargeted liquid chromatography high-resolution mass spectrometry. Raw data processing revealed 17 nicotine biotransformation products. Among these, cotinine and nornicotine were identified as the two major cellular biotransformation products. The application of multi- and univariate statistical analyses resulted in the annotation, up to a certain level of identification, of 12 compounds in the cell extracts and 13 compounds in the medium that were altered by nicotine exposure. Of these, four were verified as methylthioadenosine, cytosine, uric acid, and L-glutamate. Methylthioadenosine levels were affected in both cells and the medium, while cytosine, uric acid, and L-glutamate levels were affected in the medium only. The effects of smoking on the pathways involving these metabolites have been previously demonstrated in humans. Most of the other discriminating compounds, which were merely tentatively or not fully identified, were amino acids or amino acid derivatives. In conclusion, our preliminary data suggest that some of the potentially adverse effects related to smoking may also be expected when nicotine is consumed via snuff or nicotine pouches.

Metabolomic analysis has been explored to search for disease biomarkers in humans for some time. The application to animal species, including fish, however, is still at the beginning. In the present study, we have used targeted and untargeted metabolomics to identify metabolites in the plasma of Atlantic salmon (