Bacterial type III secretion systems serve to translocate proteins into eukaryotic cells, requiring a secreton and a translocator for proteins to pass the bacterial and host membranes. We used the contact hemolytic activity of Shigella flexneri to investigate its putative translocator. Hemolysis was caused by formation of a 25-A pore within the red blood cell (RBC) membrane. Of the five proteins secreted by Shigella upon activation of its type III secretion system, only the hydrophobic IpaB and IpaC were tightly associated with RBC membranes isolated after hemolysis. Ipa protein secretion and hemolysis were kinetically coupled processes. However, Ipa protein secretion in the immediate vicinity of RBCs was not sufficient to cause hemolysis in the absence of centrifugation. Centrifugation reduced the distance between bacterial and RBC membranes beyond a critical threshold. Electron microscopy analysis indicated that secretons were constitutively assembled at 37 degrees C before any host contact. They were composed of three parts: (a) an external needle, (b) a neck domain, and (c) a large proximal bulb. Secreton morphology did not change upon activation of secretion. In mutants of some genes encoding the secretion machinery the organelle was absent, whereas ipaB and ipaC mutants displayed normal secretons.

Bacterial flagella have many established roles beyond swimming motility. Despite clear evidence of flagella-dependent adherence, the specificity of ligands and mechanisms of binding are still debated. In this study, the molecular basis of E. coli O157:H7 and S. Typhimurium flagella binding to epithelial cell cultures was investigated. Flagella interactions with host cell surfaces were intimate and crossed cellular boundaries as demarcated by actin and membrane labelling. SEM revealed flagella disappearing into cellular surfaces and TEM of S. Typhiumurium indicated host membrane deformation and disruption in proximity to flagella. Motor mutants of E. coli O157:H7 and S. Typhimurium caused reduced haemolysis compared to wild-type, indicating that membrane disruption was in part due to flagella rotation. Flagella from E. coli O157 (H7), EPEC O127 (H6), and S. Typhimurium (P1 & P2 flagella) were shown to bind to purified intracellular components of the actin cytoskeleton and directly increase in vitro actin polymerisation rates.

ABSTRACT Background Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae rank among the primary bacterial culprits in neonatal infections and fatalities in sub-Saharan Africa. This study sought to characterize the phenotypic and genotypic features of Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae in a labour ward in Yaoundé, Cameroon. Methods A prospective and cross-sectional study spanning five months, from February 21 to June 30, 2022. Recto-vaginal swabs were obtained from expectant mothers, and nasopharyngeal swabs were collected from their babies. The samples were cultured on eosin methylene blue agar and isolates identified using the Enterosystem 18R kit. Extended-spectrum ß-lactamase (ESBL) production was assessed using CHROMAgar ESBL™ and the double disc synergy test. Antibiotic susceptibility was determined by the Kirby-Bauer disk diffusion method. Polymerase chain reaction (PCR) was employed to detect ß-lactamase genes bla SHV , bla CTX - M and bla TEM . ERIC-PCR was used to assess the clonal relatedness of isolates. Results E. coli was predominantly found in pregnant women (81%) and neonates (55%) while K. pneumoniae predominated in healthcare workers. Almost all pregnant women (90%) were colonized by one or more multi-drug resistant (MDR) isolates with 52% being concomitantly ESBL producers. Altogether, 22 neonates were positive for E. coli and/or K. pneumoniae and 19 (91%) were colonized by a MDR isolate. The bla CTX-M (75%) was the leading ß-lactamase gene detected. Conclusion Our study suggests that MDR- and ESBL- E. coli and K. pneumoniae are circulating at high prevalence in labour Yaoundé. It emphasizes the necessity for strict infection prevention and control measures in conjunction with effective antimicrobial stewardship in the country.

Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae rank among the primary bacterial culprits in neonatal infections and fatalities in sub-Saharan Africa. This study characterized the phenotypic and genotypic features of E coli and K pneumoniae in a labor ward in Yaoundé, Cameroon.

Both endogenous antibodies and a subset of antibody therapeutics engage Fc gamma receptor (FcγR)IIIa / CD16a to stimulate a protective immune response. Increasing the FcγRIIIa/IgG1 interaction improves the immune response and thus represents a strategy to improve therapeutic efficacy. FcγRIIIa is a heavily glycosylated receptor and glycan composition affects antibody-binding affinity. Though our laboratory previously demonstrated that natural killer (NK) cell N-glycan composition affected the potency of one key protective mechanism, antibody-dependent cell-mediated cytotoxicity (ADCC), it was unclear if this effect was due to FcγRIIIa glycosylation. Furthermore, the structural mechanism linking glycan composition to affinity and cellular activation remained undescribed. To define the role of individual amino acid and N-glycan residues we measured affinity using multiple FcγRIIIa glycoforms. We observed stepwise affinity increases with each glycan truncation step with the most severely truncated glycoform displaying the highest affinity. Removing the N162 glycan demonstrated its predominant role in regulating antibody-binding affinity, in contrast to four other FcγRIIIa N-glycans. We next evaluated the impact of the N162 glycan on NK cell ADCC. NK cells expressing the FcγRIIIa V158 allotype exhibited increased ADCC following kifunensine treatment to limit N-glycan processing. Notably, an increase was not observed with cells expressing the FcγRIIIa V158 S164A variant that lacks N162 glycosylation, indicating the N162 glycan is required for increased NK cell ADCC. To gain structural insight into the mechanisms of N162 regulation, we applied a novel protein isotope labeling approach in combination with solution NMR spectroscopy. FG loop residues proximal to the N162 glycosylation site showed large chemical shift perturbations following glycan truncation. These data support a model for the regulation of FcγRIIIa affinity and NK cell ADCC whereby composition of the N162 glycan stabilizes the FG loop and thus the antibody-binding site.