ABSTRACT Molecular subtypes of Small Cell Lung Cancer (SCLC) have been described based on differential expression of transcription factors (TFs) ASCL1, NEUROD1 , POU2F3 and immune-related genes. We previously reported an additional subtype based on expression of the neurogenic TF ATOH1 within our SCLC Circulating tumour cell- Derived eXplant (CDX) model biobank. Here we show that ATOH1 protein was detected in 7/81 preclinical models and 16/102 clinical samples of SCLC. In CDX models, ATOH1 directly regulated neurogenesis and differentiation programs consistent with roles in normal tissues. In ex vivo cultures of ATOH1-positive CDX, ATOH1 was required for cell survival. In vivo , ATOH1 depletion slowed tumour growth and suppressed liver metastasis. Our data validate ATOH1 as a bona fide oncogenic driver of SCLC with tumour cell survival and pro-metastatic functions. Further investigation to explore ATOH1 driven vulnerabilities for targeted treatment with predictive biomarkers is warranted.

Abstract Introduction Vasculogenic mimicry (VM), the process of tumor cell trans-differentiation to endow endothelial-like characteristics supporting de novo vessel formation, is associated with poor prognosis in several tumor types, including small cell lung cancer (SCLC). In genetically engineered mouse models (GEMMs) of SCLC, NOTCH and MYC co-operate to drive a neuroendocrine (NE) to non-NE phenotypic switch and co-operation between NE and non-NE cells is required for metastasis. Here, we define the phenotype of VM-competent cells and molecular mechanisms underpinning SCLC VM using circulating tumor cell-derived explant (CDX) models and GEMMs. Methods We analysed perfusion within VM vessels and their association with NE and non-NE phenotypes using multiplex immunohistochemistry in CDX and GEMMs. VM-proficient cell subpopulations in ex vivo cultures were molecularly profiled by RNA sequencing and mass spectrometry. We evaluated their 3D structure and defined collagen-integrin interactions. Results We show that VM vessels are present in 23/25 CDX models and in 2 GEMMs. Perfused VM vessels support tumor growth and only Notch-active non-NE cells are VM-competent in vivo and ex vivo , expressing pseudohypoxia, blood vessel development and extracellular matrix (ECM) organization signatures. On Matrigel, VM-primed non-NE cells re-model ECM into hollow tubules in an integrin β1-dependent process. Conclusions We identify VM as an exemplar of functional heterogeneity and plasticity in SCLC and these findings take significant steps towards understanding the molecular events that enable VM. These results support therapeutic co-targeting of both NE and non-NE cells to curtail SCLC progression and to improve SCLC patient outcomes in future.