The Rho-GTPase Rac1 stimulates actin remodelling at the cell periphery by relaying signals to Scar/WAVE proteins leading to activation of Arp2/3-mediated actin polymerization. Scar/WAVE proteins do not interact with Rac1 directly, but instead assemble into multiprotein complexes, which was shown to regulate their activity in vitro. However, little information is available on how these complexes function in vivo. Here we show that the specifically Rac1-associated protein-1 (Sra-1) and Nck-associated protein 1 (Nap1) interact with WAVE2 and Abi-1 (e3B1) in resting cells or upon Rac activation. Consistently, Sra-1, Nap1, WAVE2 and Abi-1 translocated to the tips of membrane protrusions after microinjection of constitutively active Rac. Moreover, removal of Sra-1 or Nap1 by RNA interference abrogated the formation of Rac-dependent lamellipodia induced by growth factor stimulation or aluminium fluoride treatment. Finally, microinjection of an activated Rac failed to restore lamellipodia protrusion in cells lacking either protein. Thus, Sra-1 and Nap1 are constitutive and essential components of a WAVE2- and Abi-1-containing complex linking Rac to site-directed actin assembly.

Abstract Actin network dynamics are pivotal in governing the motility and effector functions of immune cells. The Arp2/3 complex is a key regulator of actin filament branching, with mutations in its subunits being linked with human immunodeficiencies. While known for its role in phagocytosis and cell migration, our study uncovers a critical role of the Arp2/3 complex in safeguarding the tissue residency of mast cells (MCs), essential immune cells in allergies, venom detoxification and antigen-specific avoidance. Mechanistically, we show that MCs require Arp2/3-regulated actin filament assembly to resist their integrin-mediated mechano-coupling with their tissue niche. Arp2/3 complex depletion directs MCs into cell cycle arrest and death, which can be rescued by inhibiting their mechanical interactions with extracellular matrix. Our findings underscore the Arp2/3 complex as a mechano-protective element for maintaining MC survival and longevity in tissues, highlighting the importance of actin regulation in preserving the homeostasis of a tissue-resident immune cell population. One Sentence Summary Arp2/3 complex protects the tissue homeostasis of resident mast cell networks

CLIC4 is a cytosolic protein implicated in diverse actin-based processes, including integrin trafficking, cell adhesion and tubulogenesis. CLIC4 is rapidly recruited to the plasma membrane by G12/13-coupled receptor agonists and then partly co-localizes with β1 integrins. Receptor-mediated CLIC4 translocation depends on actin polymerization, but the mechanism and functional significance of CLIC4 trafficking are unknown. Here we show that RhoA activation by either LPA or EGF is necessary and sufficient for CLIC4 translocation, with a regulatory role for the RhoA effector mDia2, an inducer of actin polymerization. We find that CLIC4 directly interacts with the G-actin-binding protein Profilin-1 via conserved residues that are required for CLIC4 trafficking and lie in a concave surface. Consistently, silencing of Profilin-1 impaired CLIC4 trafficking induced by either LPA or EGF. CLIC4 knockdown promoted the formation of long integrin-dependent filopodia, a phenotype rescued by wild-type CLIC4 but not by trafficking-incompetent CLIC4(C35A). Our results establish CLIC4 as a Profilin-1-binding protein and suggest that CLIC4 translocation provides a feedback mechanism to modulate mDia2/Profilin-1-driven cortical actin assembly and membrane protrusion.

Dendritic cells (DCs) play a pivotal role in immune surveillance, acting as sentinels that coordinate immune responses within tissues. Although differences in the identity and functional states of DC subpopulations have been identified through multiparametric flow cytometry and single‐cell RNA sequencing, these methods do not provide information about the spatial context in which the cells are located. This knowledge is crucial for understanding tissue organisation and cellular cross‐talk. Recent developments in multiplex imaging techniques can now offer insights into this complex spatial and functional landscape. This review provides a concise overview of these imaging methodologies, emphasising their application in identifying DCs to delineate their tissue‐specific functions and aiding newcomers in navigating this field.

How mammals mount an effective immune response against infectious agents remains an unresolved fundamental issue in biology. Here, we discovered an unforeseen two-tier mechanism of neutrophil recruitment during infections, in which mechanosensing is key to initiating innate immunity. Leveraging a skin infection model and pathogenic bacteria and fungi, we demonstrate that the early recruitment of neutrophils is mainly danger-driven and partly reminiscent of sterile inflammation. Mechanistically, neutrophil recruitment is initiated by a mechanosensor-dependent pathway, involving the activation of PIEZO1 channels. This leads to LTB4 production, which, along with IL-1α, induces the release of CXCL1, promoting neutrophil arrival to the site of infection. In contrast, later neutrophil recruitment is TLR- and CXCL2-dependent, highlighting a shift towards a pathogen-driven response to sustain inflammation. These findings advance our understanding of innate immunity by uncovering that mechanical and biochemical signals integrate into a circuit that initiates innate immune responses to microbial infections.