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Myunghwan Choi
Author with expertise in Optogenetics in Neuroscience and Biophysics Research
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All-optical observation on activity-dependent nanoscale dynamics of myelinated axons

Junhwan Kwon et al.Jul 19, 2022
ABSTRACT In the mammalian brain, rapid conduction of neural information is supported by the myelin, whose functional efficacy shows steep dependence on its nanoscale cytoarchitecture. Although previous in vitro studies suggested that neural activity accompanies nanometer-scale cellular deformations, it has remained unexplored whether neural activity can dynamically remodel the myelinated axon due to the technical challenge in observing its nanostructural dynamics in living tissues. To this end, we introduced a novel all-optical approach combining a nanoscale dynamic readout based on spectral interferometry and optogenetic control of neural excitation on a living brain slice preparation. In response to optogenetically evoked neuronal burst firing, the myelinated axons exhibited progressive and reversible spectral redshifts, corresponding to the transient swelling at a subnanometer scale. We further revealed that the activity-dependent nanostructural dynamics was localized to the paranode. In summary, our novel all-optical studies substantiate that myelinated axon exhibits activity-dependent nanoscale swelling, which potentially serves to dynamically tune the transmission speed of neural information. RESEARCH SUMMARIES As neural activity involves rapid ion flux across the cell membrane, researchers have long been tried to detect the accompanying nanoscale morphological dynamics. However, measuring the activity-dependent nanostructural dynamics in the living mammalian brain has been an enigma due to the technical limitations. By combining excitatory optogenetics and in situ nanoscale metrology based on spectral interference, we demonstrate the first direct observation that the mammalian axons exhibit transient activity-dependent swelling at subnanometer-scale.
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Optical segmentation-based compressed readout of neuronal voltage dynamics

Seonghoon Kim et al.Jan 1, 2023
Functional imaging of biological dynamics generally begins with acquiring time-series images, followed by quantifying spatially averaged intensity traces for the regions of interest (ROIs). The conventional pipeline discards a substantial portion of the acquired data when quantifying intensity traces, indicative of inefficient data acquisition. Here we propose a conceptually novel acquisition pipeline that assigns each ROI to a single pixel in the detector, enabling optimally compressed acquisition of the intensity traces. As a proof-of-principle, we implemented a detection module composed of a pair of spatial light modulators and a microlens array, which segments the original image into multiple subimages by introducing distinct angular shifts to each ROI. Each subimage exclusively encodes the signal for the corresponding ROI, facilitating the compressed readout of its intensity trace using a single pixel. This spatial compression allowed for maximizing the temporal information without compromising the spatial information on ROIs. Harnessing our novel approach, we demonstrate the recording of circuit-scale neuronal voltage dynamics at over 5 kHz sampling rate, revealing the individual action potential waveforms within subcellular structures, as well as their submillisecond-scale temporal delays.
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Gustatory-neuron-supplied R-spondin-2 is required for taste bud replenishment

Jinyong Xu et al.Feb 23, 2024
ABSTRACT Taste buds undergo continuous cell turnover throughout life, and taste cell replenishment relies strictly on innervation, a phenomenon first described almost 150 years ago. Recently, we provided evidence that R-spondin 2 (Rspo2) may be the long-sought gustatory neuron-supplied factor that regulates taste stem cell activity, via its interaction with taste stem/progenitor cell-expressed receptor Rnf43/Znrf3. Yet, whether gustatory-neuron-supplied Rspo2 is strictly required for taste tissue maintenance has not been resolved. Here, we set out to determine the necessity of gustatory-neuron-supplied Rspo2 in taste tissue homeostasis using genetic approaches. We used a mouse line that harbors the neomycin-resistance gene ( NeoR ) in one of the intron regions of the Rspo2 gene, which results in reduced expression of Rspo2. The number of taste buds is significantly reduced in these mice, compared to wild-type mice, in both anterior and posterior tongue. This phenotypic change was completely reversed by removing NeoR from the Rspo2 gene, thus making it normal. We also combined adeno-associated virus (AAV)-based delivery of Cre recombinase with a mouse line amenable to Cre-based ablation of the Rspo2 exons encoding the receptor-binding domains. Such deletion of Rspo2 in the nodose-petrosal-jugular ganglion complex led to nearly complete loss of taste buds in the circumvallate papilla. Thus, we demonstrate that Rspo2 is the long-sought gustatory-neuron-supplied factor that acts on taste stem cells to maintain taste tissue homeostasis. Significance We have known for 150 years that innervation is required to induce and maintain cell replacement in taste buds. Until recently, the identity of the inducing factor produced by neurons was unknown. We have shown that R-spondin alone is sufficient to substitute for neuronal input to induce taste bud regeneration. Using a genetic loss-of-function approach, we now demonstrate that gustatory-neuron-expressed Rspo2 is required to maintain taste tissue homeostasis. Altogether, our work reveals that Rspo2 is the long-sought neuron-supplied factor that regulates the activity of taste stem/progenitor cells.
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