The genomic origins of rape oilseed Many domesticated plants arose through the meeting of multiple genomes through hybridization and genome doubling, known as polyploidy. Chalhoub et al. sequenced the polyploid genome of Brassica napus , which originated from a recent combination of two distinct genomes approximately 7500 years ago and gave rise to the crops of rape oilseed (canola), kale, and rutabaga. B. napus has undergone multiple events affecting differently sized genetic regions where a gene from one progenitor species has been converted to the copy from a second progenitor species. Some of these gene conversion events appear to have been selected by humans as part of the process of domestication and crop improvement. Science , this issue p. 950

Abstract Background The combination of long-reads and long-range information to produce genome assemblies is now accepted as a common standard. This strategy not only allow to access the gene catalogue of a given species but also reveals the architecture and organisation of chromosomes, including complex regions like telomeres and centromeres. The Brassica genus is not exempt and many assemblies based on long reads are now available. The reference genome for Brassica napus , Darmor-bzh, which was published in 2014, has been produced using short-reads and its contiguity was extremely low if compared to current assemblies of the Brassica genus. Findings Here, we report the new long-reads assembly of Darmor-bzh genome ( Brassica napus ) generated by combining long-reads sequencing data, optical and genetic maps. Using the PromethION device and six flowcells, we generated about 16M long-reads representing 93X coverage and more importantly 6X with reads longer than 100Kb. This ultralong-reads dataset allows us to generate one of the most contiguous and complete assembly of a Brassica genome to date (contigs N50 > 10Mb). In addition, we exploited all the advantages of the nanopore technology to detect modified bases and sequence transcriptomic data using direct RNA to annotate the genome and focus on resistance genes. Conclusion Using these cutting edge technologies, and in particular by relying on all the advantages of the nanopore technology, we provide the most contiguous Brassica napus assembly, a resource that will be valuable for the Brassica community for crop improvement and will facilitate the rapid selection of agronomically important traits.

ABSTRACT Traditionally, reference genomes in crop species rely on the assembly of one accession, thus occulting most of intraspecific diversity. However, rearrangements, gene duplications and transposable element content may have a large impact on the genomic structure, which could generate new phenotypic traits. Using two Brassica rapa genomes recently sequenced and assembled using long-read technology and optical mapping, we investigated structural variants and repetitive content between the two accessions and genome size variation among a core collection. We explored the structural consequences of the presence of large repeated sequences in B. rapa ‘Z1’ genome versus the B. rapa ‘Chiifu’ genome, using comparative genomics and cytogenetic approaches. First, we showed that large genomic variants on chromosomes A05, A06, A09 and A10 are due to large insertions and inversions when comparing B. rapa ‘Z1’ and B. rapa ‘Chiifu’ at the origin of important length differences in some chromosomes. For instance, lengths of ‘Z1’ and ‘Chiifu’ A06 chromosomes were estimated in silico to be 55Mb and 29Mb, respectively. To validate these observations, we compared using fluorescent in-situ hybridization (FISH) the two A06 chromosomes present in a F1 hybrid produced by crossing these two varieties. We confirmed a length difference of 17.6% between the A06 chromosomes of ‘Z1’ compared to ‘Chiifu’. Alternatively, using a Copy Number Variation approach, we were able to quantify the presence of a higher number of rDNA and Gypsy elements in ‘Z1’ genome compared to ‘Chiifu’ on different chromosomes including A06. Using flow cytometry, the total genome size of 12 Brassica accessions corresponding to a B. rapa available core collection was estimated and revealed a genome size variation of up to 16% between these accessions as well as some shared inversions. This study revealed the contribution of long-read sequencing of new accessions belonging to different cultigroups of B. rapa and highlighted the potential impact of differential insertion of repeat elements and inversions of large genomic regions in genome size intraspecific variability.

Abstract Meiotic recombination is a key biological process in plant evolution and breeding, as it generates novel genetic diversity at each generation. However, due to its importance in chromosome segregation and genomic stability, crossovers are highly regulated in both frequency and distribution. We previously demonstrated that this strict regulation is not a fatality and that it can be naturally modified (3.6-fold increased frequency and altered distribution) in an allotriploid Brassica hybrid (2 n =3 x =29; AAC), resulting from a cross between B. napus (2 n =4 x =38; AACC) and B. rapa (2 n =2 x =20; AA). Taking advantage of the recently updated Brassica napus genome assembly, which now includes the pericentromeric regions, we unambiguously demonstrated that crossovers occur in these normally cold regions in allotriploids, with the presence of crossovers as close as 375 kb from the centromere. We deciphered that this modified recombination landscape (both frequency and distribution) can be maintained in successive generations of allotriploidy, with even a slight increase of crossover frequency. We also showed that this deregulated meiotic behavior may revert back to a strictly regulated one when recovering an allotetraploid progeny in the second generation. Overall, we provide here for the first time a practical and natural way to switch on and off the tight recombination control in a polyploid crop. We also discuss the potential role of this modified regulation of recombination in polyploid speciation success.

Abstract Agriculture faces great challenges to overcome global warming and to improve system sustainability, requiring access to novel genetic diversity. So far, wild populations and local landraces remain poorly explored. This is notably the case for the two diploid species, Brassica oleracea L. (CC, 2n=2x=18) and B. rapa L. (AA, 2n=2x=20). In order to explore genetic diversity in both species, we have collected numerous populations in their center of origin, the Mediterranean basin, on a large contrasting climatic and soil gradient from northern Europe to southern sub-Saharan regions. In these areas, we also collected 14 populations belonging to five B. oleracea closely related species. Before further genetic and agronomic investigations, we controlled the absence of species misidentification using flow cytometry, sequencing of species specific chloroplast genomic region, as well as cytogenetic analyses in case of unexpected results. Looking at the 102 B. oleracea and 146 B. rapa populations showing a good germination among the 112 and 154 populations collected, seventeen populations were misidentified. The most frequent mistake was a confusion of these diploid species with B. napus . Additionally for B. rapa , 2 autotetraploid populations were observed. Habitats of the collected wild populations and landraces are described in our work. This provides a unique plant material characterization that will pave the way for further analyses investigating the genomic regions involved in climatic and microbiota adaptation. This research is supported by the H2020 Prima project ‘BrasExplor’.