Fibronectin is a major surface-associated glycoprotein of cultured fibroblasts and it is also present in human plasma. Antiserum specific for human fibronectin was used to study the distribution of fibronectin in normal adult human tissues. The protein was detected (a) characteristically in various basement membranes including capillary walls: (b) around individual smooth muscle cells and in the sarcolemma of striated muscle fibers; and (c) in the stroma of lymphatic tissue and as thin fibers in loose connective tissue. The distribution of fibronectin was distinct from that of collagen and elastic fibers, but was very similar to reticulin, as demonstrated by conventional histological staining. The results indicate that fibronectin is a major component of connective tissue matrix. The distribution also indicates that most types of adherent cells abut fibronectin-containing structures. This supports the possible role of fibronectin in cell-cell and cell-matrix interactions in tissues.

Fibronectin was purified from human plasma by affinity chromatography under nondenaturing conditions. The method was based on the previously known binding of fibronectin to gelatin. The novel features of our method are the use of arginine in the elution of fibronectin from immobilized gelatin [Vuento & Vaheri (1978) Biochem. J. 175, 333-336] and the use of arginine-agarose as second affinity step. The purified protein was homogeneous as judged by polyacrylamide-gel electrophoresis, analytical ultracentrifugation and two-dimensional immunoelectrophoresis. The yield was 60%. We propose that the method would be useful in preparation of fibronectin for studies on its biological activities, where it is important that the protein is obtained in a native state.

Ezrin, a widespread protein present in actin-containing cell-surface structures, is a substrate of some protein tyrosine kinases. Based on its primary and secondary structure similarities with talin and band 4.1 it has been suggested that this protein could play a role in linking the cytoskeleton to the plasma membrane (Gould, K.L., A. Bretscher, F.S. Esch, and T. Hunter. 1989. EMBO (Eur. Mol. Biol. Organ.), J. 8:4133-4142; Turunen, O., R. Winqvist, R. Pakkanen, K.-H. Grzeschik, T. Wahlström, and A. Vaheri. 1989. J. Biol. Chem. 264:16727-16732). To test this hypothesis, we transiently expressed the complete human ezrin cDNA, or truncated cDNAs encoding the amino- and carboxy-terminal domains of the protein, in CV-1 cells. Protein epitope tagging was used to unambiguously determine the subcellular distribution of the protein encoded by the transfected cDNA. We show that this protein is concentrated underneath the dorsal plasma membrane in all actin-containing structures and is partially detergent insoluble. The amino-terminal domain displays the same localization but is readily extractable by nonionic detergent. The carboxy-terminal domain colocalizes with microvillar actin filaments as well as with stress fibers and remains associated with actin filaments after detergent extraction, and with disorganized actin structures after cytochalasin D treatment. Our results clearly demonstrate that ezrin interacts with membrane-associated components via its amino-terminal domain, and with the cytoskeleton via its carboxy-terminal domain. The amino-terminal domain could include the main determinant that restricts the entire protein to the cortical cytoskeleton in contact with the dorsal plasma membrane and its specialized microdomains such as microvilli, microspikes and lamellipodia.

Hemorrhagic fever with renal syndrome (HFRS) comprises a variety of clinically similar diseases of viral etiology that are endemic to and sporadically epidemic throughout the Eurasian continent and Japan. Although HFRS has not been reported in North America, viruses that are antigenically similar to HFRS agents were recently isolated from rodents in the United States. Examination and comparison of eight representative isolates from endemic disease areas and from regions with no known associated HFRS indicate that these viruses represent a new and unique group that constitutes a separate genus in the Bunyaviridae family of animal viruses.

Journal Article Nephropathia Epidemica: Detection of Antigen in Bank Voles and Serologic Diagnosis of Human Infection Get access M. Brummer-Korvenkontio, M. Brummer-Korvenkontio Department of Virology and the Third Department of Medicine, University of Helsinki, Helsinki, Finland Please address requests for reprints to Dr. Markus Brummer-Korvenkontio, Department of Virology, University of Helsinki, Haartmaninkatu 3, SF-00290 Helsinki, Finland. Search for other works by this author on: Oxford Academic PubMed Google Scholar A. Vaheri, A. Vaheri Department of Virology and the Third Department of Medicine, University of Helsinki, Helsinki, Finland Search for other works by this author on: Oxford Academic PubMed Google Scholar T. Hovi, T. Hovi Department of Virology and the Third Department of Medicine, University of Helsinki, Helsinki, Finland Search for other works by this author on: Oxford Academic PubMed Google Scholar C.-H. von Bonsdorff, C.-H. von Bonsdorff Department of Virology and the Third Department of Medicine, University of Helsinki, Helsinki, Finland Search for other works by this author on: Oxford Academic PubMed Google Scholar J. Vuorimies, J. Vuorimies Department of Virology and the Third Department of Medicine, University of Helsinki, Helsinki, Finland Search for other works by this author on: Oxford Academic PubMed Google Scholar T. Manni, T. Manni Department of Virology and the Third Department of Medicine, University of Helsinki, Helsinki, Finland Search for other works by this author on: Oxford Academic PubMed Google Scholar K. Penttinen, K. Penttinen Department of Virology and the Third Department of Medicine, University of Helsinki, Helsinki, Finland Search for other works by this author on: Oxford Academic PubMed Google Scholar N. Oker-Blom, N. Oker-Blom Department of Virology and the Third Department of Medicine, University of Helsinki, Helsinki, Finland Search for other works by this author on: Oxford Academic PubMed Google Scholar J. Lähdevirta J. Lähdevirta Department of Virology and the Third Department of Medicine, University of Helsinki, Helsinki, Finland Search for other works by this author on: Oxford Academic PubMed Google Scholar The Journal of Infectious Diseases, Volume 141, Issue 2, February 1980, Pages 131–134, https://doi.org/10.1093/infdis/141.2.131 Published: 01 February 1980 Article history Received: 29 August 1979 Published: 01 February 1980

Appearance and distribution of the different collagen types and the noncollagenous glycoprotein laminin was studied during early mouse development from unfertilized ova to 8-day embryos using indirect immunofluorescence techniques. Laminin was first detected intracellularly in the 16-cell compacted morula and appeared also intercellularly along cell contours. Type IV collagen was first seen in the blastocyst mainly in the inner cell mass. After implantation intense fluorescence for both of these proteins was found in all the embryonic and extraembryonic basement membranes. The interstitial collagens type I and III were first detected in the 8-day embryo closely codistributed in tissues of mesodermal origin including the head and heart mesenchymes and in basement membranes bounded by mesodermal structures. The results establish a developmental sequence for the appearance of basement membrane and extracellular matrix glycoproteins in early mouse development. The distribution of laminin suggests the presence of extracellular matrix material already in compacted morulae. The appearance of type IV collagen coincides with differentiation of the primitive endoderm and assembly of the first embryonal basement membrane. The appearance of the interstitial collagens during mesoderm differentiation indicates a stage when mesoderm acquires connective tissue characteristics.

Ezrin, previously also known as cytovillin, p81, and 80K, is a cytoplasmic protein enriched in microvilli and other cell surface structures. Ezrin is postulated to have a membrane-cytoskeleton linker role. Recent findings have also revealed that the NH2-terminal domain of ezrin is associated with the plasma membrane and the COOH-terminal domain with the cytoskeleton (Algrain, M., O. Turunen, A. Vaheri, D. Louvard, and M. Arpin. 1993. J. Cell Biol. 120: 129-139). Using bacterially expressed fragments of ezrin we now demonstrate that ezrin has an actin-binding capability. We used glutathione-S-transferase fusion proteins of truncated ezrin in affinity chromatography to bind actin from the cell extract or purified rabbit muscle actin. We detected a binding site for filamentous actin that was localized to the COOH-terminal 34 amino acids of ezrin. No binding of monomeric actin was detected in the assay. The region corresponding to the COOH-terminal actin-binding site in ezrin is highly conserved in moesin, actin-capping protein radixin and EM10 protein of E. multilocularis, but not in merlin/schwannomin. Consequently, this site is a potential actin-binding site also in the other members of the protein family. Furthermore, the actin-binding site in ezrin shows sequence homology to the actin-binding site in the COOH terminus of the beta subunit of the actin-capping protein CapZ and one of the potential actin-binding sites in myosin heavy chain. The actin-binding capability of ezrin supports its proposed role as a membrane-cytoskeleton linker.

The production of laminin by early rat astrocytes in primary culture was investigated by double immunofluorescence staining for laminin and the glial fibrillary acidic protein (GFAP), a defined astrocyte marker. In early cultures (3 d in vitro; 3 DIV) cytoplasmic laminin was detected in all the GFAP-positive cells which formed the major population (80%) of the nonneuronal cells present in cultures from 20-21-d embryonic, newborn, or 5-d-old rat brains. Monensin treatment (10 microM, 4 h) resulted in accumulation of laminin in the Golgi region, located using labeled wheat germ agglutinin. Laminin started gradually to disappear from the cells with the time in culture, was absent in star-shaped, apparently mature astrocytes, but remained as pericellular matrix deposits. The disappearance of cellular laminin was dependent on the age of the animal and the time in culture so that it started earlier in cultures from 5-d-old rat brains (5 DIV) and approximately following the in vivo age difference in cultures from newborn (12 DIV) and embryonic (14 DIV) rat brains. Our results indicate that laminin is a protein of early astrocytes and also deposited by them in primary culture, thus suggesting a role for this glycoprotein in the development of the central nervous system.

A cell-type specific glycoprotein antigen (SFA) from fibroblast surface appears in human plasma and serum. The amount of SFA in serum was reduced if the blood coagulation clot was removed at a low temperature. SFA could be bound to Sepharose-conjugated fibrinogen and to fibrin powder at 0 degrees C and was subsequently released when the temperature was elevated to plus 37 degrees C. This procedure resulted in a 10-fold enrichment of SFA relative to other serum proteins. SFA was found to be concentrated in the cryoprecipitate fraction of human plasma and was copurified with the cold insoluble globulin (CIG) with procedures published for the purification of the latter component. SFA/CIG is not soluble at low temperatures as such and its appearance in the cryoprecipitate fraction of plasma is likely to be due to its affinity to cryofibrinogen evident from these experiments. The biological significance of the interaction of fibroblast surface SFA moleculres with fibrin(ogen) is not known.

Human HT-1080 fibrosarcoma cells produce urokinase-type plasminogen activator (u-PA) and type 1 plasminogen activator inhibitor (PAI-1). We found that after incubation of monolayer cultures with purified native human plasminogen in serum-containing medium, bound plasmin activity could be eluted from the cells with tranexamic acid, an analogue of lysine. The bound plasmin was the result of plasminogen activation on the cell surface; plasmin activity was not taken up onto cells after deliberate addition of plasmin to the serum-containing medium. The cell surface plasmin formation was inhibited by an anticatalytic monoclonal antibody to u-PA, indicating that this enzyme was responsible for the activation. Preincubation of the cells with diisopropyl fluorophosphate-inhibited u-PA led to a decrease in surface-bound plasmin, indicating that a large part, if not all, of the cell surface plasminogen activation was catalyzed by surface-bound u-PA. In the absence of plasminogen, most of the cell surface u-PA was present in its single-chain proenzyme form, while addition of plasminogen led to formation of cell-bound two-chain u-PA. The latter reaction was catalyzed by cell-bound plasmin. Cell-bound u-PA was accessible to inhibition by endogenous PAI-1 and by added PAI-2, while the cell-bound plasmin was inaccessible to serum inhibitors, but accessible to added aprotinin and an anticatalytic monoclonal antibody. A model for cell surface plasminogen activation is proposed in which plasminogen binding to cells from serum medium is followed by plasminogen activation by trace amounts of bound active u-PA, to form bound plasmin, which in turn serves to produce more active u-PA from bound pro-u-PA. This exponential process is subject to regulation by endogenous PAI-1 and limited to the pericellular space.