Abstract Hypersaline environments are the source of many viruses infecting different species of halophilic euryarchaea. Information on infection mechanisms of archaeal viruses is scarce, due to the lack of genetically accessible virus-host models. Recently a new archaeal siphovirus, Haloferax tailed virus 1 (HFTV1), was isolated together with its host belonging to the genus Haloferax, but it is not infectious on the widely used model euryarcheon Hfx. volcanii. To gain more insight into the biology of HFTV1 host strain LR2-5, we studied characteristics that might play a role in its virus susceptibility: growth-dependent motility, surface layer, filamentous surface structures and cell shape. Its genome sequence showed that LR2-5 is a new strain of Hfx. gibbonsii. LR2-5 lacks obvious viral defense systems, such as CRISPR-Cas, and the composition of its cell surface is different from Hfx. volcanii, which might explain the different viral host range. This work provides first deep insights into the relationship between the host of halovirus HFTV1 and other members of the genus Haloferax . Given the close relationship to the genetically accessible Hfx. volcanii , LR2-5 has high potential as a new model for virus-host studies in euryarchaea.

Many prokaryotes use swimming motility to move toward favorable conditions and escape adverse surroundings. Regulatory mechanisms governing bacterial flagella-driven motility are well-established; however, little is yet known about the regulation underlying swimming motility propelled by the archaeal cell surface structure, the archaella. Previous research showed that the deletion of the adhesion pilins (PilA1-6), subunits of the type IV pili cell surface structure, renders the model archaeon

Abstract Many prokaryotes use swimming motility to move toward favorable conditions and escape adverse surroundings. Regulatory mechanisms governing bacterial flagella-driven motility are well-established, however, little is yet known about the regulation underlying swimming motility propelled by the archaeal cell surface structure, the archaella. Previous research showed that deletion of the adhesion pilins (PilA1-6), subunits of the type IV pili cell surface structure, renders the model archaeon Haloferax volcanii non-motile. In this study, we used EMS mutagenesis and a motility assay to identify motile suppressors of the Δ pilA [ 1-6 ] strain. Of the eight suppressors identified, six contain missense mutations in archaella biosynthesis genes, arlI and arlJ . Overexpression of these arlI and arlJ mutant constructs in the respective multi-deletion strains Δ pilA [ 1-6 ]Δ arlI and Δ pilA [ 1-6 ]Δ arlJ confirmed their role in suppressing the Δ pilA [ 1-6 ] motility defect. Additionally, three suppressors harbor co-occurring disruptive missense and nonsense mutations in cirA , a gene encoding a proposed regulatory protein. A deletion of cirA resulted in hypermotility, while cirA overexpression in wild-type cells led to decreased motility. Moreover, qRT-PCR analysis revealed that in wild-type cells, higher expression levels of arlI , arlJ , and the archaellin gene arlA1 were observed in motile early-log phase rod-shaped cells compared to non-motile mid-log phase disk-shaped cells. Conversely, Δ cirA cells, which form rods during both early and mid-log phases, exhibited similar expression levels of arl genes in both growth phases. Our findings contribute to a deeper understanding of the mechanisms governing archaeal motility, highlighting the involvement of ArlI, ArlJ, and CirA in pilin- mediated motility regulation. Importance Archaea are close relatives of eukaryotes and play crucial ecological roles. Certain behaviors, such as swimming motility, are thought to be important for archaeal environmental adaptation. Archaella, the archaeal motility appendages, are evolutionarily distinct from bacterial flagella, and the regulatory mechanisms driving archaeal motility are largely unknown. Previous research has linked the loss of type IV pili subunits to archaeal motility suppression. This study reveals three Haloferax volcanii proteins involved in pilin-mediated motility regulation, offering a deeper understanding of motility regulation in this understudied domain while also paving the way for uncovering novel mechanisms that govern archaeal motility. Understanding archaeal cellular processes will help elucidate the ecological roles of archaea as well as the evolution of these processes across domains.

Abstract Australian isolates of Haloquadratum walsbyi , a square-shaped haloarchaeon, often harbor small cryptic plasmids of the pL6-family, approximately 6 kb in size. These plasmids exhibit a highly conserved gene arrangement and encode a replicase similar to those of betapleolipoviruses. To assess their global distribution and recover more examples for analysis, fifteen additional plasmids were reconstructed from the metagenomes of seven hypersaline sites across four countries: Argentina, Australia, Puerto Rico, and Spain. Including the five previously described plasmids, the average plasmid size is 6,002 bp, with an average G+C content of 52.5%. The tetramers GGCC and CTAG are either absent or significantly under-represented, except in the two plasmids with the highest %G+C. All plasmids share a similar arrange-ment of genes organized as outwardly facing replication and ATPase modules, but variations were observed in some core genes, such as F2, and some plasmids had acquired accessory genes. Two plasmids, pCOLO-c1 and pISLA-c6 shared 92.7% nt identity despite originating from Argentina and Spain, respectively. Numerous metagenomic CRISPR spacers matched sequences in the fifteen reconstructed plasmids, indicating frequent invasion of haloarchaea. Spacers could be assigned to haloarchaeal genera by mapping their associated direct repeats (DR), with half of these matching to Haloquadratum . Finally, strand-specific metatranscriptome (RNA-seq) data could be used to demonstrate the active transcription of two pL6-family plasmids, including antisense transcripts.

Abstract Background Annotation ambiguities and annotation errors are a general challenge in genomics. While a reliable protein function assignment can be obtained by experimental characterization, this is expensive and time-consuming, and the number of such Gold Standard Proteins (GSP) with experimental support remains very low compared to proteins annotated by sequence homology, usually through automated pipelines. Even a GSP may give a misleading assignment when used as a reference: the homolog may be close enough to support isofunctionality, but the substrate of the GSP is absent from the species being annotated. In such cases the enzymes cannot be isofunctional. Here, we examine a variety of such issues in halophilic archaea (class Halobacteria), with a strong focus on the model haloarchaeon Haloferax volcanii . Results Annotated proteins of Hfx. volcanii were identified for which public databases tend to assign a function that is probably incorrect. In some cases, an alternative, probably correct, function can be predicted or inferred from the available evidence but this has not been adopted by public databases because experimental validation is lacking. In other cases, a probably invalid specific function is predicted by homology, and while there is evidence that this assigned function is unlikely, the true function remains elusive. We list 50 of those cases, each with detailed background information so that a conclusion about the most likely biological function can be drawn. For reasons of brevity and comprehension, only key aspects are listed in the main text, with detailed information being provided in a corresponding section of the Supplementary Material. Conclusions Compiling, describing and summarizing these open annotation issues and functional predictions will benefit the scientific community in the general effort to improve the evaluation of protein function assignments and more thoroughly detail them. By highlighting the gaps and likely annotation errors currently in the databases, we hope this study will provide a framework for experimentalists to systematically confirm (or disprove) our function predictions or to uncover yet unexpected functions.