Summary. Liver stiffness was measured by transient elastography (FibroScan®) in 228 consecutive patients with chronic viral hepatitis, with (115) or without cirrhosis (113), to study its correlations with serum transaminases [alanine aminotransferase (ALT)], fibrosis stage and surrogate noninvasive markers of fibrosis (APRI, FORNS, FibroTest and hyaluronic acid). The dynamic profiles of serum transaminases and liver stiffness were compared by multiple testing in 31 patients during a 6‐month follow‐up. We identified 8.3 and 14 kPa as the fibrosis ≥F2 and cirrhosis cut‐offs, respectively: their sensitivities were 85.2%/78.3%; specificities 90.7%/98.2%; positive predictive values 93.9%/97.8%; negative predictive values 78.8%/81.6%; diagnostic accuracies 87.3%/88.2%. FibroScan ® performed better than the other surrogate markers of fibrosis ( P < 0.001). Other than fibrosis, other factors independently associated with liver stiffness were ALT for all patients and chronic hepatitis patients ( P < 0.001), and 12‐month persistently normal ALT (biochemical remission, P < 0.001) in cirrhotics. In patients with biochemical remission either spontaneous or after antiviral therapy (48 of 228, 21%), liver stiffness was lower than in patients with identical fibrosis stage, but elevated ALT ( P < 0.001). The liver stiffness dynamic profiles paralleled those of ALT, increasing 1.3‐ to 3‐fold during ALT flares in 10 patients with hepatitis exacerbations. Liver stiffness remained unchanged in 21 with stable biochemical activity ( P = 0.001). In conclusion, transient elastography is a new liver parameter that behaves as a reliable surrogate marker of fibrosis in chronic viral hepatitis patients, provided that its relationship with major changes of biochemical activity is taken into account.

Mammalian target of rapamycin (mTOR) is a central controller of cell growth. mTOR assembles into two distinct multiprotein complexes called mTOR complex 1 (mTORC1) and mTORC2. Here we show that the mTORC1 component raptor is critical for muscle function and prolonged survival. In contrast, muscles lacking the mTORC2 component rictor are indistinguishable from wild-type controls. Raptor-deficient muscles become progressively dystrophic, are impaired in their oxidative capacity, and contain increased glycogen stores, but they express structural components indicative of oxidative muscle fibers. Biochemical analysis indicates that these changes are probably due to loss of activation of direct downstream targets of mTORC1, downregulation of genes involved in mitochondrial biogenesis, including PGC1α, and hyperactivation of PKB/Akt. Finally, we show that activation of PKB/Akt does not require mTORC2. Together, these results demonstrate that muscle mTORC1 has an unexpected role in the regulation of the metabolic properties and that its function is essential for life.