Abstract Bacteria use the type VI secretion system (T6SS) to deliver toxic effectors into bacterial or eukaryotic cells during interbacterial competition, host colonization, or when resisting predation. The identity of many effectors remains unknown. Here, we identify RIX, a new domain that defines a class of polymorphic T6SS cargo effectors. RIX, which is widespread in the Vibrionaceae family, is located at N-termini of proteins containing diverse antibacterial and anti-eukaryotic toxin domains. We demonstrate that RIX-containing proteins are delivered via T6SS into neighboring cells, and that RIX is necessary and sufficient for secretion. We show that RIX-containing proteins can also act as tethers, enabling the T6SS-mediated delivery of other cargo effectors by a previously undescribed mechanism. RIX-containing proteins significantly enlarge the repertoire of known T6SS effectors, especially those with anti-eukaryotic activities. Our findings also suggest that T6SSs may play a major, currently underappreciated, role in interactions between vibrios and eukaryotes.

Abstract Vibrio coralliilyticus ( Vcor ) is a pathogen of coral and shellfish, leading to devastating economic and ecological consequences worldwide. Although rising ocean temperatures correlate with increased Vcor pathogenicity, the specific molecular mechanisms and determinants contributing to virulence remain poorly understood. Here, we systematically analyzed the type VI secretion system (T6SS), a contact-dependent toxin delivery apparatus, in Vcor . We identified two omnipresent T6SSs that are activated at temperatures in which Vcor becomes virulent; T6SS1 is an antibacterial system mediating interbacterial competition, whereas T6SS2 mediates anti-eukaryotic toxicity and contributes to mortality during infection of an aquatic model organism, Artemia salina . Using comparative proteomics, we identified the T6SS1 and T6SS2 toxin arsenals of three Vcor strains with distinct disease etiologies. Remarkably, T6SS2 secretes at least nine novel anti-eukaryotic toxins comprising core and accessory repertoires. We propose that T6SSs differently contribute to Vcor ’s virulence: T6SS2 plays a direct role by targeting the host, while T6SS1 plays an indirect role by eliminating competitors. Author Summary Coral reefs are diverse ecosystems providing habitats for various fish, invertebrates, and microorganisms. Climate change, leading to rising ocean water temperatures, correlates with coral bleaching and mass mortality events. An implicated causal agent of coral disease outbreaks is the marine bacterium Vibrio coralliilyticus . Here, we found that two toxin injection systems present in all Vibrio coralliilyticus strains are regulated by temperature; we revealed the toxins that they secrete and their function in competition against rival bacteria and in the intoxication of an animal host. Our findings implicate these systems as previously unappreciated contributors to Vibrio coralliilyticus virulence, illuminating possible targets to treat or prevent coral infection.

ABSTRACT Gram-negative bacteria use type VI secretion systems (T6SSs) to deliver toxic effector proteins into neighboring cells. Cargo effectors are secreted by binding non-covalently to the T6SS apparatus. Occasionally, effector secretion is assisted by an adaptor protein, although the adaptor itself is not secreted. Here, we report a new T6SS secretion mechanism, in which an effector and a co-effector are secreted together. Specifically, we identified a novel periplasm-targeting effector that is secreted together with its co-effector, which contains a MIX (marker for type sIX effector) domain previously reported only in polymorphic toxins. The effector and co-effector directly interact, and they are dependent on each other for secretion. We termed this new secretion mechanism “a binary effector module”, and we show that it is widely distributed in marine bacteria.

Abstract Type VI secretion systems (T6SSs) play a major role in interbacterial competition and in bacterial interactions with eukaryotic cells. The distribution of T6SSs and the effectors they secrete vary between strains of the same bacterial species. Therefore, a pan-genome investigation is required to better understand the T6SS potential of a bacterial species of interest. Here, we performed a comprehensive, systematic analysis of T6SS gene clusters and auxiliary modules found in the pan-genome of Vibrio parahaemolyticus , an emerging pathogen widespread in marine environments. We identified four different T6SS gene clusters within genomes of this species; two systems appear to be ancient and widespread, whereas the other two systems are rare and appear to have been more recently acquired via horizontal gene transfer. In addition, we identified diverse T6SS auxiliary modules containing putative effectors with either known or predicted toxin domains. Many auxiliary modules are possibly horizontally shared between V. parahaemolyticus genomes, since they are flanked by DNA mobility genes. We further investigated a DUF4225-containing protein encoded on an Hcp auxiliary module, and we showed that it is an antibacterial T6SS effector that exerts its toxicity in the bacterial periplasm, leading to cell lysis. Computational analyses of DUF4225 revealed a widespread toxin domain associated with various toxin delivery systems. Taken together, our findings reveal a diverse repertoire of T6SSs and auxiliary modules in the V. parahaemolyticus pan-genome, as well as novel T6SS effectors and toxin domains that can play a major role in the interactions of this species with other cells. Importance Gram-negative bacteria employ toxin delivery systems to mediate their interactions with neighboring cells. Vibrio parahaemolyticus , an emerging pathogen of humans and marine animals, was shown to deploy antibacterial toxins into competing bacteria via the type VI secretion system (T6SS). Here, we analyzed 1,727 V. parahaemolyticus genomes and revealed the pan-genome T6SS repertoire of this species, including the T6SS gene clusters, horizontally shared auxiliary modules, and toxins. We also identified a role for a previously uncharacterized domain, DUF4225, as a widespread antibacterial toxin associated with diverse toxin delivery systems.

Vibrio coralliilyticus is a pathogen of coral and shellfish, leading to devastating economic and ecological consequences worldwide. Although rising ocean temperatures correlate with increased V . coralliilyticus pathogenicity, the specific molecular mechanisms and determinants contributing to virulence remain poorly understood. Here, we systematically analyzed the type VI secretion system (T6SS), a contact-dependent toxin delivery apparatus, in V . coralliilyticus . We identified 2 omnipresent T6SSs that are activated at temperatures in which V . coralliilyticus becomes virulent; T6SS1 is an antibacterial system mediating interbacterial competition, whereas T6SS2 mediates anti-eukaryotic toxicity and contributes to mortality during infection of an aquatic model organism, Artemia salina . Using comparative proteomics, we identified the T6SS1 and T6SS2 toxin arsenals of 3 V . coralliilyticus strains with distinct disease etiologies. Remarkably, T6SS2 secretes at least 9 novel anti-eukaryotic toxins comprising core and accessory repertoires. We propose that T6SSs differently contribute to V . coralliilyticus ’s virulence: T6SS2 plays a direct role by targeting the host, while T6SS1 plays an indirect role by eliminating competitors.

ABTRACT Gram-negative bacteria often employ the type VI secretion system (T6SS) to deliver diverse cocktails of antibacterial effectors into rival bacteria. In many cases, even when the identity of the delivered effectors is known, their toxic activity and mechanism of secretion are not. Here, we investigate VPA1263, a Vibrio parahaemolyticus T6SS effector that belongs to a widespread class of polymorphic effectors containing a MIX domain. We reveal a C-terminal DNase toxin domain belonging to the HNH nuclease superfamily, and we show that it mediates the antibacterial toxicity of this effector during bacterial competition. Furthermore, we demonstrate that the VPA1263 MIX domain is necessary for T6SS-mediated secretion and intoxication of recipient bacteria. These results are the first indication of a functional role for MIX domains in T6SS secretion. IMPORTANCE Specialized protein delivery systems are used during bacterial competition to deploy cocktails of toxins that target conserved cellular components. Although numerous toxins have been revealed, the activity of many remains unknown. In this study, we investigated such a toxin from the pathogen Vibrio parahaemolyticus . Our findings indicated that the toxin employs a DNase domain to intoxicate competitors. We also showed that a domain used as a marker for secreted toxins is required for secretion of the toxin via a type VI secretion system.

Abstract Competition is a critical aspect of bacterial life, as it enables niche establishment and facilitates the acquisition of essential nutrients. Warfare between Gram-negative bacteria is largely mediated by the type VI secretion system (T6SS), a dynamic nanoweapon that delivers toxic effector proteins from an attacking cell to adjacent bacteria in a contact-dependent manner. Effector-encoding bacteria prevent self-intoxication and kin cell killing by the expression of immunity proteins, which prevent effector toxicity by specifically binding their cognate effector and occluding its active site. In this study, we investigate Tsi3, a previously uncharacterized T6SS immunity protein present in multiple strains of the human pathogen Acinetobacter baumannii . We show that Tsi3 is the cognate immunity protein of the antibacterial effector of unknown function Tse3. Our bioinformatic analyses indicate that Tsi3 homologs are widespread among Gram-negative bacteria, often encoded within T6SS effector-immunity modules. Surprisingly, we found that Tsi3 homologs possess a characteristic formylglycine-generating enzyme (FGE) domain, which is present in various enzymatic proteins. Our data shows that Tsi3-mediated immunity is dependent on Tse3-Tsi3 protein-protein interactions and that Tsi3 homologs from various bacteria do not protect against Tse3-dependent bacterial killing. Thus, we conclude that Tsi3 homologs are unlikely to be functional enzymes. Collectively, our work identifies FGE domain-containing proteins as important mediators of immunity against T6SS attacks and indicates that the FGE domain can be co-opted as a scaffold in multiple proteins to carry out diverse functions. Importance Despite the wealth of knowledge on the diversity of biochemical activities carried out by T6SS effectors, comparably little is known about the various strategies bacteria employ to prevent susceptibility to T6SS-dependent bacterial killing. Our work establishes a novel family of T6SS immunity proteins with a characteristic FGE domain. This domain is present in enzymatic proteins with various catalytic activities. Our characterization of Tsi3 expands the known functions carried out by FGE-like proteins to include defense during T6SS-mediated bacterial warfare. Moreover, it highlights the evolution of FGE domain-containing proteins to carry out diverse biological functions.

Gram-negative bacteria employ the type VI secretion system (T6SS) to deliver toxic effectors into neighboring cells and outcompete rivals. Although many effectors have been identified, their secretion mechanism often remains unknown. Here, we describe WHIX, a domain that is sufficient to mediate the secretion of effectors via the T6SS. Remarkably, we find WHIX in T6SS effectors that contain a single toxic domain, as well as in effectors that contain two distinct toxic domains fused to either side of WHIX. We demonstrate that the latter, which we name double-edged sword effectors, require two cognate immunity proteins to antagonize their toxicity. Furthermore, we show that WHIX can be used as a chassis for T6SS-mediated secretion of multiple domains. Our findings reveal a new class of polymorphic T6SS cargo effectors with a unique secretion domain that can deploy two toxic domains in one shot, possibly reducing recipients' ability to defend themselves.

Abstract Bacteria are found in ongoing conflicts with rivals and predators, which lead to an evolutionary arms race and the development of innate and adaptive immune systems. Although diverse bacterial immunity mechanisms have been recently identified, many remain unknown, and their dissemination within bacterial populations is poorly understood. Here, we describe a widespread genetic element, defined by the Gamma-Mobile-Trio (GMT) proteins, that serves as a mobile bacterial weapons armory. We show that GMT islands have cargo comprising various combinations of secreted antibacterial toxins, anti-phage defense systems, and secreted anti-eukaryotic toxins. This finding led us to identify four new anti-phage defense systems encoded within GMT islands and reveal their active domains and mechanisms of action. We also find the phage protein that triggers the activation of one of these systems. Thus, we can identify novel toxins and defense systems by investigating proteins of unknown function encoded within GMT islands. Our findings imply that the concept of ‘defense islands’ may be broadened to include other types of bacterial innate immunity mechanisms, such as antibacterial and anti-eukaryotic toxins that appear to stockpile with anti-phage defense systems within GMT ‘weapon islands’.

Abstract All strains of the marine bacterium Vibrio parahaemolyticus harbor a type VI secretion system (T6SS) named T6SS2, suggesting that this system plays an important role in the life cycle of this emerging pathogen. Although T6SS2 was recently shown to play a role in interbacterial competition, its effector repertoire remains unknown. Here, we employed proteomics to investigate the T6SS2 secretome of two V. parahaemolyticus strains, and we identified several antibacterial effectors encoded outside of the main T6SS2 gene cluster. We revealed two T6SS2-secreted proteins that are conserved in this species, indicating that they constitute the core secretome of T6SS2; other identified effectors are found only in subsets of strains, suggesting that they comprise an accessory effector arsenal of T6SS2. Remarkably, a conserved Rhs repeat-containing effector serves as a quality control checkpoint and is required for T6SS2 activity. Our results reveal the effector repertoire of a conserved T6SS, some of which have no known activity and have not been previously associated with T6SSs.