Paroxysmal nocturnal hemoglobinuria is an acquired hematopoietic disease characterized by abnormal blood cell populations in which the biosynthesis of the glycosylphosphatidylinositol (GPI) anchor is deficient. Deficiency of surface expressions of GPI-anchored complement inhibitors leads to complement-mediated hemolysis. Here we report that PIG-A, which participates in the early step of GPI anchor biosynthesis, is the gene responsible for paroxysmal nocturnal hemoglobinuria. Affected granulocytes and B lymphocytes had the same somatic mutation of PIG-A, indicating their clonal origin from a multipotential hematopoietic stem cell. We localized PIG-A to the X chromosome, which accounts for expression of the recessive phenotype of the somatic mutation and the fact that the same one of the multiple biosynthetic steps is affected in all patients so far characterized.

The glycosylphosphatidylinositol (GPI) anchor is a membrane attachment structure of many proteins and occurs in a wide variety of eukaryotes from yeasts to mammals. The structure of the core of the GPI anchor is conserved in protozoa and mammals and so is its biosynthetic pathway. A complementary DNA encoding a human protein termed PIG-A (phosphatidylinositol glycan-class A) was cloned. PIG-A was necessary for synthesis of N -acetylglucosaminyl-phosphatidylinositol, the very early intermediate in GPI-anchor biosynthesis.

beta 2-Microglobulin (beta 2M) is a major constituent of amyloid fibrils in hemodialysis-associated amyloidosis, a complication of long-term hemodialysis patients. Amyloid fibril proteins were isolated from connective tissues forming carpal tunnels in hemodialysis patients with carpal tunnel syndrome. Two-dimensional polyacrylamide gel electrophoresis and Western blotting demonstrated that most of the beta 2M forming amyloid fibrils exhibited a more acidic pI value than normal beta 2M. This acidic beta 2M was also found in a small fraction of beta 2M in sera and urine from these patients, whereas heterogeneity was not observed in healthy individuals. We purified acidic and normal beta 2M from the urine of long-term hemodialysis patients and compared their physicochemical and immunochemical properties. Acidic beta 2M, but not normal beta 2M, was brown in color and fluoresced, both of which are characteristics of advanced glycation end products (AGEs) of the Maillard reaction. Immunochemical studies showed that acidic beta 2M reacted with anti-AGE antibody and also with an antibody against an Amadori product, an early product of the Maillard reaction, but normal beta 2M did not react with either antibody. Incubating normal beta 2M with glucose in vitro resulted in a shift to a more acidic pI, generation of fluorescence, and immunoreactivity to the anti-AGE antibody. The beta 2M forming amyloid fibrils also reacted with anti-AGE antibody. These data provided evidence that AGE-modified beta 2M is a dominant constituent of the amyloid deposits in hemodialysis-associated amyloidosis.

Summary Leaf mould, caused by Fulvia fulva , is a devastating disease of tomato plants. In many commercial tomato cultivars, resistance to this disease is governed by the Cf-9 locus, which comprises five paralogous genes ( Cf-9A–9E ) that encode receptor-like proteins. Two of these proteins contribute to resistance: Cf-9C recognizes the previously identified F. fulva effector Avr9 and provides resistance during all plant growth stages, while Cf-9B recognises the yet-unidentified F. fulva effector Avr9B and provides mature plant resistance only. In recent years, F. fulva strains have emerged that have overcome the Cf-9 locus, with Cf-9C circumvented through Avr9 deletion. To understand how Cf-9B is circumvented, we set out to identify Avr9B . Comparative genomics, in planta transient expression assays and gene complementation experiments were used to identify Avr9B , while gene sequencing was used to assess Avr9B allelic variation across a worldwide strain collection. A strict correlation between Avr9 deletion and resistance-breaking mutations in Avr9B was observed in strains recently collected from Cf-9 cultivars, whereas Avr9 deletion but no mutations in Avr9B were observed in older strains. This research showcases how F. fulva has evolved to sequentially break down the two functional resistance genes of the complex Cf-9 locus and highlights that this locus now has limited value for controlling leaf mould disease in worldwide commercial tomato production.

Summary Leaf mould, caused by Fulvia fulva , is a devastating disease of tomato plants. In many commercial tomato cultivars, resistance to this disease is governed by the Cf‐9 locus, which encodes five paralogous receptor‐like proteins. Two of these proteins confer resistance: Cf‐9C recognises the previously identified F. fulva effector Avr9 and provides resistance during all plant growth stages, while Cf‐9B recognises the yet‐unidentified F. fulva effector Avr9B and provides mature plant resistance only. In recent years, F. fulva strains have emerged that can overcome the Cf‐9 locus, with Cf‐9C circumvented through Avr9 deletion. To understand how Cf‐9B is circumvented, we set out to identify Avr9B . Comparative genomics, transient expression assays and gene complementation experiments were used to identify Avr9B , while gene sequencing was used to assess Avr9B allelic variation across a world‐wide strain collection. A strict correlation between Avr9 deletion and resistance‐breaking mutations in Avr9B was observed in strains recently collected from Cf‐9 cultivars, whereas Avr9 deletion but no mutations in Avr9B were observed in older strains. This research showcases how F. fulva has evolved to sequentially break down the Cf‐9 locus and stresses the urgent need for commercial tomato cultivars that carry novel, stacked resistance genes active against this pathogen.

Abstract Leaf mold caused by the ascomycete fungus Cladosporium fulvum is a devastating disease of tomato plants. The mycoparasitic fungus Hansfordia pulvinata is an effective biocontrol agent that parasitizes C. fulvum hyphae on leaves and secretes 13-deoxyphomenone, an eremophilane-type sesquiterpene, which was also identified as a sporulation-inducing factor in Aspergillus oryzae . Here, we identified deoxyphomenone biosynthesis ( DPH ) gene clusters conserved in both H. pulvinata and Aspergillus section Flavi including A. oryzae and A. flavus . Functional disruption of DPH1 orthologous genes encoding sesquiterpene cyclase in H. pulvinata , A. oryzae and its close relative A. flavus revealed that deoxyphomenone in H. pulvinata had exogenic antifungal activity against the host fungus C. fulvum and controlled endogenic sporulation in Aspergillus species. Deoxyphomenone also inhibited mycelial growth of C. fulvum and the non-host tomato pathogen Pseudocercospora fuligena . Complete DPH clusters, highly similar to those in H. pulvinata , were exclusive to Aspergillus section Flavi , while species in other Aspergillus sections contained fragmented DPH clusters. A comparative genomics analysis revealed that these DPH gene clusters share a common origin and are horizontally transferred across large taxonomic distances from an ancestor of Aspergillus to H. pulvinata . Our results suggest that, after horizontal transfer, H. pulvinata maintained the DPH cluster as the inhibitory effect of deoxyphomenone on spore germination and mycelial growth contributed to its mycoparasitism on the host fungus C. fulvum .

Complication management is crucial in patients receiving mechanical circulatory devices. However, there are limited data on the association between the risks of complications and device type in patients with percutaneous ventricular assist devices (PVAD).