Airway macrophages (AM) are the predominant immune cell in the lung and play a crucial role in preventing infection, making them a target for host directed therapy. Macrophage effector functions are associated with cellular metabolism. A knowledge gap remains in understanding metabolic reprogramming and functional plasticity of distinct human macrophage subpopulations, especially in lung resident AM. We examined tissue-resident AM and monocyte derived macrophages (MDM; as a model of blood derived macrophages) in their resting state and after priming with IFN-γ or IL-4 to model the Th1/Th2 axis in the lung. Human macrophages, regardless of origin, had a strong induction of glycolysis in response to IFN-γ or upon stimulation. IFN-γ significantly enhanced cellular energetics in both AM and MDM by upregulating both glycolysis and oxidative phosphorylation. Upon stimulation, AM do not decrease oxidative phosphorylation unlike MDM which shift to Warburg-like metabolism. IFN-γ priming promoted cytokine secretion in AM. Blocking glycolysis with 2-deoxyglucose significantly reduced IFN-γ driven cytokine production in AM, indicating that IFN-γ induces functional plasticity in human AM, which is mechanistically mediated by glycolysis. Directly comparing responses between macrophages, AM were more responsive to IFN-γ priming and dependent on glycolysis for cytokine secretion than MDM. Interestingly, TNF production was under the control of glycolysis in AM and not in MDM. MDM exhibited glycolysis-dependent upregulation of HLA-DR and CD40, whereas IFN-γ upregulated HLA-DR and CD40 on AM independently of glycolysis. These data indicate that human AM are functionally plastic and respond to IFN-γ in a manner distinct from MDM. These data provide evidence that human AM are a tractable target for inhalable immunomodulatory therapies for respiratory diseases.

KH-type splicing regulatory protein (KHSRP) is a multifunctional nucleic acid binding protein implicated in key aspects of cancer cell biology: inflammation and cell-fate determination. However, the role KHSRP plays in colorectal cancer (CRC) tumorigenesis remains largely unknown. Using a combination of in silico analysis of large datasets, ex vivo analysis of protein expression in patients, and mechanistic studies using in vitro models of CRC, we investigated the oncogenic role of KHSRP. We demonstrated KHSRP expression in the epithelial and stromal compartments of both primary and metastatic tumors. Elevated expression was found in tumor versus matched normal tissue, and we validated these findings in larger independent cohorts in silico. KHSRP expression was a prognostic indicator of worse overall survival (HR=3.74, 95% CI = 1.43-22.97, p=0.0138). Mechanistic data in CRC cell line models supported a role of KHSRP in driving epithelial cell proliferation in both a primary and metastatic setting, through control of the G1/S transition. Additionally, KHSRP promoted a pro-angiogenic extracellular environment by regulating the secretion of oncogenic proteins involved in diverse cellular processes such as migration and response to cellular stress. Our study provides novel mechanistic insight into the tumor-promoting effects of KHSRP in CRC.