Abstract Six Transmembrane Epithelial Antigen of Prostate 2 (STEAP2) belongs to a family of metalloreductases, which indirectly aid in uptake of iron and copper ions. Its role in hepatocellular carcinoma (HCC) remains to be characterized. Here, we report that STEAP2 expression was upregulated in HCC tumors compared with paired adjacent non-tumor tissues by RNA sequencing, RT-qPCR, Western blotting, and immunostaining. Public HCC datasets demonstrated upregulated STEAP2 expression in HCC and positive association with tumor grade. Transient and stable knockdown (KD) of STEAP2 in HCC cell lines abrogated their malignant phenotypes in vitro and in vivo, while STEAP2 overexpression showed opposite effects. STEAP2 KD in HCC cells led to significant alteration of genes associated with extracellular matrix organization, cell adhesion/chemotaxis, negative enrichment of an invasiveness signature gene set, and inhibition of cell migration/invasion. STEAP2 KD reduced intracellular copper levels and activation of stress-activated MAP kinases including p38 and JNK. Treatment with copper rescued the reduced HCC cell migration due to STEAP2 KD and activated p38 and JNK. Furthermore, treatment with p38 or JNK inhibitors significantly inhibited copper-mediated cell migration. Thus, STEAP2 plays a malignant-promoting role in HCC cells by driving migration/invasion via increased copper levels and MAP kinase activities. Our study uncovered a novel molecular mechanism contributing to HCC malignancy and a potential therapeutic target for HCC treatment.

Cytotoxic neuronal swelling and glutamate excitotoxicity are two hallmarks of ischemic stroke. However, the underlying molecular mechanisms are not well understood. Here, it is reported that SWELL1, the essential subunit of the volume-regulated anion channel (VRAC), plays a dual role in ischemic injury by promoting neuronal swelling and glutamate excitotoxicity. SWELL1 expression is upregulated in neurons and astrocytes after experimental stroke in mice. The neuronal SWELL1 channel is activated by intracellular hypertonicity, leading to Cl

SZ-685C, an anthracycline compound derived from the mangrove endophytic fungus

ABSTRACT Intellectual disability (ID) affects ∼2% of the general population and is often genetic in origin. ID-associated genes are enriched for epigenetic factors, including those encoding the largest family of histone lysine acetyltransferases (KAT5-KAT8). Among them is KAT6A , whose de novo heterozygous mutations cause KAT6A Syndrome (or Arboleda-Tham Syndrome), with ID as a common clinical feature. However, the underlying molecular mechanisms remain elusive. Here, we show that haploinsufficiency of Kat6a impairs learning and memory in mice, and specific deletion of Kat6a in excitatory neurons recapitulates the hippocampus-dependent memory deficits. Unexpectedly, KAT6A deficiency results in impaired synaptic structure and plasticity in hippocampal CA3, but not in CA1 region. Combining single-nucleus RNA-sequencing and chromatin analysis, we identify a CA3-enriched gene Rspo2 , encoding a Wnt activator R-spondin 2, as a key transcriptional target of KAT6A. Moreover, deletion of Rspo2 in excitatory neurons phenocopies the loss of Kat6a , resulting in defective Wnt/β-catenin signaling and synaptic plasticity in CA3, and abnormal cognitive behaviors in mice. Importantly, restoring RSPO2 expression in CA3 pyramidal neurons rescues the deficits in Wnt signaling and learning-associated behaviors in Kat6a mutant mice. Collectively, our results demonstrate that KAT6A plays a critical role in regulating synaptic plasticity and memory formation through RSPO2-mediated Wnt signaling in hippocampal CA3, shedding new light on the fundamental mechanisms of ID and providing potential therapeutic targets for the treatment of KAT6A Syndrome and related neurodevelopmental diseases.

Following peripheral nerve injury, extracellular ATP-mediated purinergic signaling is crucial for spinal cord microglia activation and neuropathic pain. However, the mechanisms of ATP release remain poorly understood. Here, we show that volume-regulated anion channel (VRAC) is an ATP-releasing channel and is activated by inflammatory mediator sphingosine-1-phosphate (S1P) in microglia. Mice with microglia-specific deletion of Swell1 (also known as Lrrc8a), a VRAC essential subunit, had reduced peripheral nerve injury-induced increase in extracellular ATP in spinal cord. The mutant mice also exhibited decreased spinal microgliosis, dorsal horn neuronal hyperactivity, and both evoked and spontaneous neuropathic pain-like behaviors. We further performed high-throughput screens and identified an FDA-approved drug dicumarol as a novel and potent VRAC inhibitor. Intrathecal administration of dicumarol alleviated nerve injury-induced mechanical allodynia in mice. Our findings suggest that ATP-releasing VRAC in microglia is a key spinal cord determinant of neuropathic pain and a potential therapeutic target for this debilitating disease.