Abstract Plants recognize surrounding microbes by sensing microbe-associated molecular patterns (MAMPs) to activate pattern-triggered immunity (PTI). Despite their significance for microbial control, the evolution of PTI responses remains largely uncharacterized. Employing comparative transcriptomics of six Arabidopsis thaliana accessions and three additional Brassicaceae species for PTI responses to the MAMP flg22, we identified a set of genes with expression changes under purifying selection in the Brassicaceae species and genes exhibiting species-specific expression signatures. Variation in flg22-triggered transcriptome and metabolome responses across Brassicaceae species was incongruent with their phylogeny while expression changes were strongly conserved within A. thaliana , suggesting directional selection for some species-specific gene expression. We found the enrichment of WRKY transcription factor binding sites in 5’-regulatory regions in conserved and species-specific responsive genes, linking the emergence of WRKY-binding sites with the evolution of gene responses in PTI. Our findings advance our understanding of transcriptome evolution during biotic stress.

Eukaryotic genomes express numerous long intergenic non-coding RNAs (lincRNAs) that do not overlap any coding genes. Some lincRNAs function in various aspects of gene regulation, but it is not clear in general to what extent lincRNAs contribute to the information flow from genotype to phenotype. To explore this question, we systematically analyzed cellular roles of lincRNAs in Schizosaccharomyces pombe. Using seamless CRISPR/Cas9-based genome editing, we deleted 141 lincRNA genes to broadly phenotype these mutants, together with 238 diverse coding-gene mutants for functional context. We applied high-throughput colony-based assays to determine mutant growth and viability in benign conditions and in response to 145 different nutrient, drug and stress conditions. These analyses uncovered phenotypes for 47.5% of the lincRNAs and 96% of the protein-coding genes. For 110 lincRNA mutants, we also performed high-throughput microscopy and flow-cytometry assays, linking 37% of these lincRNAs with cell-size and/or cell-cycle control. With all assays combined, we detected phenotypes for 84 (59.6%) of all lincRNA deletion mutants tested. For complementary functional inference, we analyzed colony growth of strains ectopically overexpressing 113 lincRNA genes under 47 different conditions. Of these overexpression strains, 102 (90.3%) showed altered growth under certain conditions. Clustering analyses provided further functional clues and relationships for some of the lincRNAs. These rich phenomics datasets associate lincRNA mutants with hundreds of phenotypes, indicating that most of the lincRNAs analyzed exert cellular functions in specific environmental or physiological contexts. This study provides groundwork to further dissect the roles of these lincRNAs in the relevant conditions.

Genomes produce widespread long non-coding RNAs (lncRNAs) of largely unknown functions. We characterize aal1 (aging-associated lncRNA) which is induced in quiescent cells of fission yeast. Deletion of aal1 shortens the chronological lifespan of non-dividing cells, while ectopic overexpression of aal1 prolongs their lifespan, indicating that this lncRNA acts in trans. The overexpression of aal1 leads to the repression of ribosomal protein genes and inhibition of cell growth, and aal1 genetically interacts with coding genes functioning in protein translation. The aal1 RNA localizes to the cytoplasm and associates with ribosomes. Notably, aal1 deletion or overexpression is sufficient to increase or decrease the cellular ribosome content. The rpl1901 mRNA, encoding a ribosomal protein, is a binding target of aal1. The levels of rpl1901 are reduced ~2-fold by aal1, which is critical and sufficient to extend the lifespan. Remarkably, the expression of aal1 lncRNA in Drosophila triggers an extension of fly lifespan. We propose that aal1 reduces the ribosome content by decreasing the levels of Rpl1901, thus attenuating protein translation and promoting longevity. Although the aal1 lncRNA itself is not conserved, its effect in flies raises the possibility that animals feature related mechanisms that modulate aging, based on the conserved translational machinery.

Abstract The circadian oscillator allows organisms to synchronize their cellular and physiological activities with diurnal environmental changes. In plants, the circadian clock is primarily composed of multiple transcriptional-translational feedback loops. Regulators of post-transcriptional events, such as pre-mRNA splicing factors, are also involved in controlling the pace of the clock. However, in most cases the underlying mechanisms remain unclear. We have previously identified XAP5 CIRCADIAN TIMEKEEPER ( XCT ) as an Arabidopsis thaliana circadian clock regulator with uncharacterized molecular functions. Here, we report that XCT physically interacts with components of the spliceosome, including members of the Nineteen Complex (NTC). PacBio Iso-Seq data show that xct mutants have transcriptome-wide pre-mRNA splicing defects, predominantly aberrant 3’ splice site selection. Expression of a genomic copy of XCT fully rescues those splicing defects, demonstrating that functional XCT is important for splicing. Dawn-expressed genes are significantly enriched among those aberrantly spliced in xct mutants, suggesting that the splicing activity of XCT may be circadian regulated. Furthermore, we show that loss of function mutations in PRP19A or PRP19B , two homologous core NTC components, suppress the short circadian period phenotype of xct-2 . However, we do not see rescue of the splicing defects of core clock genes in prp19 xct mutants. Therefore, our results suggest that XCT may regulate splicing and the clock function through genetically separable pathways.

Abstract Genomes produce widespread long non-coding RNAs (lncRNAs) of largely unknown functions. We characterize aal1 (ageing-associated lncRNA), which is induced in quiescent fission yeast cells. Deletion of aal1 shortens the chronological lifespan of non-dividing cells, while ectopic overexpression prolongs their lifespan, indicating that aal1 acts in trans. Overexpression of aal1 represses ribosomal-protein gene expression and inhibits cell growth, and aal1 genetically interacts with coding genes functioning in protein translation. The aal1 lncRNA localizes to the cytoplasm and associates with ribosomes. Notably, aal1 overexpression decreases the cellular ribosome content and inhibits protein translation. The aal1 lncRNA binds to the rpl1901 mRNA, encoding a ribosomal protein. The rpl1901 levels are reduced ~2-fold by aal1, which is sufficient to extend lifespan. Remarkably, the expression of the aal1 lncRNA in Drosophila boosts fly lifespan. We propose that aal1 reduces the ribosome content by decreasing Rpl1901 levels, thus attenuating the translational capacity and promoting longevity. Although aal1 is not conserved, its effect in flies suggests that animals feature related mechanisms that modulate ageing, based on the conserved translational machinery.