Abstract Protein mycoloylation is a newly characterized post-translational modification (PTM) specifically found in Corynebacteriales , an order of bacteria that includes numerous human pathogens. Their envelope is composed of a unique outer membrane, the so-called mycomembrane made of very-long chain fatty acids, named mycolic acids. Recently, some mycomembrane proteins including PorA have been unambiguously shown to be covalently modified with mycolic acids in the model organism Corynebacterium glutamicum by a mechanism that relies on the mycoloyltransferase MytC. This PTM represents the first example of protein O -acylation in prokaryotes and the first example of protein modification by mycolic acid. Through the design and synthesis of trehalose monomycolate (TMM) analogs, we prove that i ) MytC is the mycoloyltransferase directly involved in this PTM, ii ) TMM, but not TDM, is a suitable mycolate donor for PorA mycoloylation, iii ) MytC is able to discriminate between an acyl and a mycoloyl chain in vitro unlike other trehalose mycoloyltransferases. We also solved the structure of MytC acyl-enzyme obtained with a soluble short TMM analogs which constitutes the first mycoloyltransferase structure with a covalently linked to an authentic mycolic acid moiety. These data highlight the great conformational flexibility of the active site of MytC during the reaction cycle and pave the way for a better understanding of the catalytic mechanism of all members of the mycoloyltransferase family including the essential Antigen85 enzymes in Mycobacteria .

A-to-I mRNA editing occurs during fungal sexual reproduction with an unknown mechanism. Here, we demonstrated that the eukaryotic tRNA-specific heterodimeric deaminase FgTad2-FgTad3, not typically associated with mRNA editing, is responsible for A-to-I mRNA editing in Fusarium graminearum. This editing capacity relies on the interaction between FgTad3 and a sexual stage-specific protein called Ame1. The interaction emerged in Sordariomycetes. Key residues involved in the interaction have been identified. Expression and activity of FgTad2-FgTad3 are regulated through alternative promoters, alternative translation initiation, and post-translational modifications. FgTad2-FgTad3-Ame1 efficiently edits target mRNAs in yeasts, bacteria, and human cells, with significant implications for developing base editors in therapy and agriculture. This study reveals mechanisms, regulation, and evolution of RNA editing in fungi, emphasizing protein-protein interactions in controlling enzyme function.

SUMMARY Feeding is essential for animal survival and reproduction and is regulated by both internal states and external stimuli. However, little is known about how internal states influence the perception of external sensory cues that regulate feeding behavior. Here, we investigated the neuronal and molecular mechanisms behind nutritional state-mediated regulation of gustatory perception in control of feeding behavior in the brown planthopper and Drosophila . We found that feeding increases the expression of the cholecystokinin-like peptide, sulfakinin (SK), and the activity of a set of SK-expressing neurons. Starvation elevates the transcription of the sugar receptor Gr64f and SK negatively regulates the expression of Gr64f in both insects. This Gr64f regulation is by direct action of SK neurons on Gr64f-expressing neurons of the proboscis and proleg tarsi that co-express the SK receptor CCKLR-17D3. Our findings thus demonstrate how nutritional state induces peptide signaling to modulate sweet perception and thereby feeding behavior.