MM
M.J. Marcaida
Author with expertise in Nanofluidics and Nanopore Technology
Achievements
Open Access Advocate
Key Stats
Upvotes received:
0
Publications:
9
(67% Open Access)
Cited by:
1
h-index:
19
/
i10-index:
24
Reputation
Biology
< 1%
Chemistry
< 1%
Economics
< 1%
Show more
How is this calculated?
Publications
0

Missense mutations in CMS22 patients reveal that PREPL has both enzymatic and non-enzymatic functions

Yenthe Monnens et al.Dec 19, 2023
Abstract Congenital myasthenic syndrome-22 (CMS22) is a rare genetic disorder caused by mutations in the prolyl endopeptidase-like ( PREPL ) gene. Since previous reports only described patients with deletions and nonsense mutations in PREPL , nothing is known about the effect of missense mutations in the pathology of CMS22. In this study, we have characterized missense mutations in PREPL in three CMS22 patients, all with hallmark phenotypes. Biochemical evaluation revealed that these missense mutations do not impair hydrolase activity, thereby challenging the conventional diagnostic criteria. Structural analysis shows that the mutations affect regions most likely involved in intra-protein or protein-protein interactions. Indeed, binding to a selected group of known interactors was differentially reduced for the three mutants. The importance of non-hydrolytic functions of PREPL was investigated in catalytically inactive PREPL p.Ser559Ala cell lines which showed that hydrolytic activity of PREPL is needed for normal mitochondrial function but not for regulating AP1-mediated transport in the trans-Golgi network. In conclusion, these studies show that CMS22 can be caused not only by deletion and truncation of PREPL but also by missense mutations that do not necessarily result in a loss of hydrolytic activity of PREPL. Graphical abstract
0

The polyQ expansion modulates the configuration and phosphorylation of huntingtin

Tae‐Yang Jung et al.Jul 31, 2019
The polyQ-expansion at the N-terminus of huntingtin (HTT) is the prime cause of Huntington's disease. The recent cryo-EM structure of HTT with HAP40 provides information on the protein's prominent HEAT-repeats. Here, we present analyses of the impact of polyQ-length on the conformation of HTT by cryo-EM, the domain-interactions by cross-linking mass spectrometry and the phosphorylation of HTT. The cryo-EM analysis of normal (Q23-) and disease (Q78-) type HTTs in their apo forms shows that the structures of apo HTTs significantly differ from the structure of HTT-HAP40, and that the polyQ expansion induces global structural changes consisting of significant domain movements of the C-HEAT domain relative to the N-HEAT domain. In addition, we show that the polyQ-expansion alters the phosphorylation pattern across the full-length HTT and that the specific phosphorylation (Ser2116p) in turn affects the global structure of HTT, which influences the activity of polyQ-expanded HTT. These results provide a molecular basis for the effect of the N-terminal polyQ segment on HTT structure and activity, that may be important for the cell-selective toxicity of mutant HTT.
0

Molecular mode of action of an Acyl Protein thioesterase

Laurence Abrami et al.Jun 19, 2020
ABSTRACT Many biochemical reactions occur at the membrane interfaces. The proper control of these reactions requires spatially and temporally controlled recruitment of protein complexes. These assemblies are largely regulated by post-translational modifications and a frequent one is S-acylation, which consists of the addition of medium length acyl chains. Reversibility of this modification is ensured by acyl protein thioesterases (APTs), which are poorly understood enzymes. Using a combination of computational, structural, biochemical, and cellular approaches, we dissect the mode of action of a major cellular thioesterase, APT2 (LYPLA2). We show that for APT2 to encounter its targets, it must interact with membranes by two consecutive steps, the insertion of a hydrophobic loop and subsequent S-acylation by the ZDHHC3 or ZDHHC7 palmitoyltransferases. Once bound, APT2 deforms the lipid bilayer to extract the acyl chain bound to its substrate, capturing it in a hydrophobic pocket and allowing hydrolysis. Deacylation releases APT2, allowing it to bind to other membranes, but also renders it vulnerable to ubiquitination and proteasomal degradation. This molecular understanding of APT2 paves the way to understand the dynamics of APT2-mediated depalmitoylation throughout the endomembrane system.
0

Exploring new nanopore sensors from the aerolysin family

Nuria Dı́az et al.Apr 10, 2024
Abstract Aerolysin-like proteins are a family of β-pore-forming toxins which are widely present in all kingdoms of life. Recently, this family of proteins is gaining attention because of their biotechnological application as nanopore sensors for sensing and sequencing of biomolecules. Here, we explore the possibilities of using the knowledge of the sequence and structure of proteins to screen and explore new potential nanopore candidates. However, in spite of the conserved structural fold, the sequence identity in this family is very low. This complicates their sequence alignment, hindering the understanding of their pore structure and properties, therefore limiting further biotechnological applications. In an attempt to further understand the properties of aerolysin-like pores, we analyzed the pore structure of three family members, Clostridium perfringens epsilon toxin (ETX), Laetiporus sulphureus lectin (LSL) and Bacillus thuringiensis parasporin-2, comparing it to aerolysin. Their structure and sensing capabilities for ssDNA were first assessed by in silico methods. Moreover, ETX was characterized experimentally in planar lipid membranes for the detection of biomolecules. We found that ETX can form three distinct pore conformations, each presenting a specific open pore current, and only one of them being able to translocate ssDNA. When the ssDNA translocate through ETX, the depth of current blockage is higher compared to aerolysin which indicates a higher sensitivity for molecular sensing. Our findings open a new venue for improving and diversifying nanopore capabilities for molecular sensing.