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Jonathan Houseley
Author with expertise in Regulation of Chromatin Structure and Function
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Genome-wide analysis of DNA replication and DNA double strand breaks by TrAEL-seq

Neesha Kara et al.Aug 10, 2020
Abstract Understanding the distribution of sites at which replication forks stall, and the ensuing fork processing events, requires genome-wide methods sensitive to both changes in replication fork structure and the formation of recombinogenic DNA ends. Here we describe T ransferase- A ctivated E nd L igation seq uencing (TrAEL-seq), a method that captures single stranded DNA 3’ ends genome-wide and with base pair resolution. TrAEL-seq labels DNA breaks, and profiles both stalled and processive replication forks in yeast and mammalian cells. Replication forks stalling at defined barriers and expressed genes are detected by TrAEL-seq with exceptional signal-to-noise, most likely through labelling of DNA 3’ ends exposed during fork reversal. TrAEL-seq also labels unperturbed processive replication forks to yield maps of replication fork direction similar to those obtained by Okazaki fragment sequencing, however TrAEL-seq is performed on asynchronous populations of wild-type cells without incorporation of labels, cell sorting, or biochemical purification of replication intermediates, rendering TrAEL-seq simpler and more widely applicable than existing replication fork direction profiling methods. The specificity of TrAEL-seq for DNA 3’ ends also allows accurate detection of double strand break sites after the initiation of DNA end resection, which we demonstrate by genome-wide mapping of meiotic double strand break hotspots in a dmc1 Δ mutant. Overall, TrAEL-seq provides a flexible and robust methodology with high sensitivity and resolution for studying DNA replication and repair, which will be of significant use in determining mechanisms of genome instability.
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Dietary change without caloric restriction maintains a youthful profile in ageing yeast

Dorottya Horkai et al.Jul 20, 2022
Abstract Caloric restriction increases lifespan and improves ageing health, but it is unknown whether these outcomes can be separated or achieved through less severe interventions. Here we show that an unrestricted galactose diet in early life minimises change during replicative ageing in budding yeast, irrespective of diet later in life. Lifespan and average mother cell division rate are comparable between glucose and galactose diets, but markers of senescence and the progressive dysregulation of gene expression observed on glucose are minimal on galactose, showing these to be associated rather than intrinsic aspects of the replicative ageing process. Respiration on galactose is critical for minimising hallmarks of ageing, and forced respiration during ageing on glucose by over-expression of the mitochondrial biogenesis factor Hap4 also has the same effect though only in a fraction of cells. This fraction maintains Hap4 activity to advanced age with low senescence and a youthful gene expression profile, whereas other cells in the same population lose Hap4 activity, undergo dramatic dysregulation of gene expression and accumulate fragments of chromosome XII (ChrXIIr), which are tightly associated with senescence. Our findings support the existence of two separable ageing trajectories in yeast. We propose that a complete shift to the healthy ageing mode can be achieved in wild-type cells through dietary change in early life without restriction.
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Stimulation of adaptive gene amplification by origin firing under replication fork constraint

Alex Whale et al.Mar 4, 2021
Abstract Adaptive mutations can cause drug resistance in cancers and pathogens, and increase the tolerance of agricultural pests and diseases to chemical treatment. When and how adaptive mutations form is often hard to discern, but we have shown that adaptive copy number amplification of the copper resistance gene CUP1 occurs in response to environmental copper due to CUP1 transcriptional activation. Here we dissect the mechanism by which CUP1 transcription in budding yeast stimulates copy number variation (CNV). We show that transcriptionally stimulated CNV requires TREX-2 and Mediator, such that cells lacking TREX-2 or Mediator respond normally to copper but cannot acquire increased resistance. Mediator and TREX-2 cause replication stress by tethering transcribed loci to nuclear pores, a process known as gene gating, and transcription at the CUP1 locus causes a TREX-2-dependent accumulation of replication forks indicative of replication fork stalling. TREX-2-dependent CUP1 gene amplification occurs by a Rad52 and Rad51-mediated homologous recombination mechanism that is enhanced by histone H3K56 acetylation and repressed by Pol32, factors known to alter the frequency of template switching during break induced replication (BIR). CUP1 amplification is also critically dependent on late firing replication origins present in the CUP1 repeats, and mutations that remove or inactivate these origins strongly suppress the acquisition of copper resistance. We propose that replicative stress imposed by nuclear pore association causes replication bubbles from these origins to collapse soon after firing, leaving an epigenetic scar of H3K56 acetylation that promotes template switching during later break induced replication events. The capacity for inefficient replication origins to promote copy number variation renders certain genomic regions more fragile than others, and therefore more likely to undergo adaptive evolution through de novo gene amplification.
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DNA replication during acute MEK inhibition drives acquisition of resistance through amplification of the BRAF oncogene

Prasanna Channathodiyil et al.Mar 23, 2021
Abstract Mutations and gene amplifications that confer drug resistance emerge frequently during chemotherapy, but their mechanism and timing is poorly understood. Here, we investigate BRAF V600E amplification events that underlie resistance to the MEK inhibitor selumetinib (AZD6244/ARRY-142886) in COLO205 cells, a well-characterised model for reproducible emergence of drug resistance, and show that de novo amplification of BRAF is the primary path to resistance irrespective of pre-existing amplifications. Selumetinib causes long-term G1 arrest accompanied by reduced expression of DNA replication and repair genes, but cells stochastically re-enter the cell cycle during treatment despite continued repression of pERK1/2. Most DNA replication and repair genes are re-expressed as cells enter S and G2, however, mRNAs encoding a subset of factors important for error-free replication and chromosome segregation including TIPIN, PLK2 and PLK3 remain at low abundance. This suggests that DNA replication in drug is more error prone and provides an explanation for the DNA damage observed under long-term RAF-MEK-ERK1/2 pathway inhibition. To test the hypothesis that DNA replication in drug promotes de novo BRAF amplification, we exploited the combination of palbociclib and selumetinib. Combined treatment with selumetinib and a dose of palbociclib sufficient to reinforce G1 arrest in selumetinib-sensitive cells, but not to impair proliferation of resistant cells, delays the emergence of resistant colonies, meaning that escape from G1 arrest is critical in the formation of resistant clones. Our findings demonstrate that acquisition of MEK inhibitor resistance often occurs through de novo gene amplification and can be suppressed by impeding cell cycle entry in drug.
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Abstract B020: Novel WRN helicase inhibitors selectively target microsatellite unstable cancer cells

Gabriele Picco et al.Jun 10, 2024
Abstract Microsatellite-unstable (MSI) cancers require WRN helicase to resolve replication stress due to expanded DNA (TA)n-dinucleotide repeats. WRN is a promising synthetic lethal target for MSI tumours, and WRN inhibitors are in development. Here, we used CRISPR-Cas9 base editing to map WRN residues critical for MSI cells, validating the helicase domain as the primary drug target. Fragment-based screening led to the development of potent and highly selective WRN helicase covalent inhibitors. These compounds selectively suppressed MSI model growth In vitro and In vivo by mimicking WRN loss, inducing DNA double-strand breaks at expanded TA-repeats and DNA damage. Assessment of biomarkers in preclinical models linked TA-repeat expansions and mismatch repair (MMR) alterations to compound activity. Efficacy was confirmed in immunotherapy-resistant organoids and patient-derived xenograft (PDX) models. The discovery of potent, selective covalent WRN inhibitors provides proof of concept for synthetic-lethal targeting of WRN in MSI cancer and tools to dissect WRN biology. Citation Format: Gabriele Picco, Yanhua Rao, Angham Al Saedi, Yang Lee, Shriram Bhosle, Carmen Herranz-Ors, Samantha Walker, Kieron May, Matthew Coelho, Jon Houseley, Benjamin Schwartz, Mathew J. Garnett. Novel WRN helicase inhibitors selectively target microsatellite unstable cancer cells [abstract]. In: Proceedings of the AACR Special Conference in Cancer Research: Expanding and Translating Cancer Synthetic Vulnerabilities; 2024 Jun 10-13; Montreal, Quebec, Canada. Philadelphia (PA): AACR; Mol Cancer Ther 2024;23(6 Suppl):Abstract nr B020.
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Senescence in yeast is associated with chromosome XII fragments rather than ribosomal DNA circle accumulation

Andre Zylstra et al.Jul 14, 2022
Abstract The massive accumulation of extrachromosomal ribosomal DNA circles (ERCs) in yeast mother cells has been long cited as the primary driver of replicative ageing. ERCs arise through ribosomal DNA (rDNA) recombination and a wealth of genetic data connects rDNA instability events giving rise to ERCs with shortened lifespan and other ageing pathologies. However, we understand little about the molecular effects of ERC accumulation. Here we studied ageing in the presence and absence of ERCs, and unexpectedly found no evidence of gene expression differences that might indicate stress responses or metabolic feedback caused by ERCs. Neither did we observe any global change in the widespread disruption of gene expression that accompanies yeast ageing, altogether suggesting that ERCs are largely inert. Much of the differential gene expression that accompanies ageing in yeast was actually associated with markers of the Senescence Entry Point (SEP), showing that senescence rather than age underlies these changes. Cells passed the SEP irrespective of ERCs, but we found the SEP to be associated with copy number amplification of a region of chromosome XII between the rDNA and the telomere (ChrXIIr), which arises in aged cells due to rDNA instability but through a different mechanism to ERCs. Therefore, although rDNA copy number increases dramatically with age due to ERC accumulation, our findings implicate ChrXIIr, rather than ERCs, as the primary driver of senescence during budding yeast ageing.
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