Abstract Molnupiravir (MO) is a pyrimidine nucleoside anti‐SARS‐CoV‐2 drug. MO treatment could cause mild liver injury. However, the underlying mechanism of MO‐induced liver injury and the metabolic pathway of MO in vivo are unclear. In this study, metabolomics analysis and molecular biology methods were used to explore these issues. Through metabolomics analysis, it was found that the homeostasis of pyrimidine, purine, lysophosphatidylcholine (LPC), and amino acids in mice was destroyed after MO treatment. A total of 80 changed metabolites were detected. Among these changed metabolites, 4‐ethylphenyl sulfate, dihydrouracil, and LPC 20:0 was related to the elevation of alkaline phosphatase (ALP), interleukin‐6 (IL6), and nuclear factor kappa‐B (NF‐κB). The levels of 4‐ethylphenyl sulfate, dihydrouracil, and LPC 20:0 in plasma were positively correlated with their levels in the liver, suggesting that these metabolites were associated with MO‐induced liver injury. MO treatment could increase NHC and cytidine levels, activate cytidine deaminase (CDA), and increase LPC levels. CDA and LPC could increase the mRNA expression level of toll‐like receptor (TLR). The current study indicated that the elevation of hepatic TLR may be an important reason for MO leading to the liver injury.

To explore the effect and mechanism of Gegen Qinlian Decoction(GQD) in inhibiting M1 polarization of macrophages under inflammatory hypoxia by simulating intestinal hypoxia microenvironment in vitro. A tri-gas incubator was used to simulate normal physiological hypoxia of the colon and inflammatory hypoxia microenvironments of ulcerative colitis(UC). RAW264.7 macrophages were divided into 18.5% O_(2 )(normoxia group), 4% O_2(physiological hypoxia group), and 1% O_2(inflammatory hypoxia group), and they were induced by lipopolysaccharide(LPS) for 24 h. M1 polarization was detected by flow cytometry. Under the condition of 1% inflammatory hypoxia, they were divided into blank group, model group, and GQD-containing serum low, medium, and high dose groups. Flow cytometry was used to detect M1 polarization marker CD86, and ELISA was used to detect the expression of tumor necrosis factor-α(TNF-α) and interleukin-1β(IL-1β) in cell supernatant. The mRNA expression of hypoxia-inducible factor-1α(HIF-1α), TNF-α, and IL-1β was detected by qRT-PCR. Western blot was used to detect the expression of HIF-1α/nuclear transcription factor-κB(NF-κB) signaling pathway-related proteins. The nuclear translocation of NF-κB p65 was detected by immunofluorescence. The results showed that the positive rate of CD86 in the 1% O_2 group was the highest. Under the condition of 1% inflammatory hypoxia, compared with the blank group, the expression of CD86, TNF-α, IL-1β, and HIF-1α in the model group increased. Compared with the model group, each group of GQD could reduce the expression of CD86, TNF-α, IL-1β, and HIF-1α. Compared with the blank group, the protein expression of HIF-1α, NF-κB p65, p-IKKα/β, and p-IκBα in the model group increased. Compared with the model group, the protein expression of HIF-1α, NF-κB p65, p-IKKα/β, and p-IκBα in GQD groups was significantly decreased. Compared with the blank group, NF-κB p65 in the model group entered the nucleus significantly. Compared with the model group, the nuclear expression of NF-κB p65 was decreased in each GQD group. Studies have shown that GQD may protect the intestine by down-regulating the HIF-1α/NF-κB signaling pathway to inhibit M1 polarization of macrophages and secretion of related inflammatory factors under 1% inflammatory hypoxia.

Abstract The protein tyrosine phosphatase SHP-1 is a key negative regulator in cancer by dephosphorylating multiple target molecules. Specially in the NFκB signaling, where NFκB1/Rela dimer translocate to the nucleus and activate target gene transcription, SHP-1 inhibits the phosphorylation of Rela, while its regulation on NFκB1 has been unknown, especially in pathogen-induced inflammation. Chinese tongue sole, a representative flatfish, has been widely used as a genomics and disease model. Using the teleost and cellular model, we revealed for the first time that SHP-1 inhibits NFκB1 phosphorylation and nuclear translocation by interacting with NFκB1, thereby suppressing NFκB signaling to inhibit bacterial inflammation. In addition, we showed that SHP-1 decreased mortality and alleviated histopathological deterioration, manifested in the inhibition of immune-related pathways and secretion of pro- inflammatory cytokines. Using cellular model, SHP-1 overexpression reduced macrophages M1 polarization, phagocytosis, and oxidative stress, while silencing SHP- 1 exhibited opposite effects. Our findings systematically dissect the functions of SHP- 1 and provide mechanistic insights into the control of inflammation-related diseases. Teaser SHP-1 help maintain the cellular and individual homeostasis by inhibiting the excessive inflammation and immunity via regulating the NFκB signaling.