Human H3N2 influenza viruses are subject to rapid antigenic evolution which translates into frequent updates of the composition of seasonal influenza vaccines. Despite these updates, the effectiveness of influenza vaccines against H3N2-associated disease is suboptimal. Seasonal influenza vaccines primarily induce hemagglutinin-specific antibody responses. However, antibodies directed against influenza neuraminidase (NA) also contribute to protection. Here, we analysed the antigenic diversity of a panel of N2 NAs derived from human H3N2 viruses that circulated between 2009 and 2017. The antigenic breadth of these NAs was determined based on the NA inhibition (NAI) of a broad panel of ferret and mouse immune sera that were raised by infection and recombinant N2 NA immunisation. This assessment allowed us to distinguish at least four antigenic groups in the N2 NAs derived from human H3N2 viruses that circulated between 2009 and 2017. Computational analysis further revealed that the amino acid residues in N2 NA that have a major impact on susceptibility to NAI by immune sera are in proximity of the catalytic site. Finally, a machine learning method was developed that allowed to accurately predict the impact of mutations that are present in our N2 NA panel on NAI. These findings have important implications for the renewed interest to develop improved influenza vaccines based on the inclusion of a protective NA antigen formulation.

Abstract Human H3N2 influenza viruses are subject to rapid antigenic evolution which translates into frequent updates of the composition of seasonal influenza vaccines. Despite these updates, the effectiveness of influenza vaccines against H3N2-associated disease is suboptimal. Seasonal influenza vaccines primarily induce hemagglutinin-specific antibody responses. However, antibodies directed against influenza neuraminidase (NA) also contribute to protection. Here, we analyzed the antigenic diversity of a panel of N2 NAs derived from human H3N2 viruses that circulated between 2009 and 2017. The antigenic breadth of these NAs was determined based on the NA inhibition (NAI) of a broad panel of ferret and mouse immune sera that were raised by infection and recombinant N2 NA immunization. This assessment allowed us to distinguish at least 4 antigenic groups in the N2 NAs derived from human H3N2 viruses that circulated between 2009 and 2017. Computational analysis further revealed that the amino acid residues in N2 NA that have a major impact on susceptibility to NAI by immune sera are in proximity of the catalytic site. Finally, a machine learning method was developed that allowed to accurately predict the impact of mutations that are present in our N2 NA panel on NAI. These findings have important implications for the renewed interest to develop improved influenza vaccines based on the inclusion of a protective NA antigen formulation.

Abstract The nature of the interplay between immunity and viral variation is infinitely adaptive. Infection frequently induces immune responses against variation-prone epitopes, rather than against spatially hidden conserved epitopes. It thus remains a substantial challenge to elicit the immune responses to the conserved epitopes providing broad-spectrum immunity. We developed an approach of scaffold-mediated mosaic display to present monomeric influenza virus hemagglutinins (HAs), which exposes highly conserved stem and interface epitopes. Stable monomers were rationally engineered from H1 and H3 subtypes and B type HA trimers, with amino acid mutations at the monomer-monomer interface and for disulfide bond formation, and fused to a self-assembling scaffold, to generate a mosaic HA monomer-displaying nanoparticle, 3HA-np. Immunization with 3HA-np induced broadly neutralizing antibodies (bnAbs) in mice and ferrets and protected against challenges with H1N1 and H3N2 viruses. Competitive immunoassays revealed that 3HA-np induced high interface- and stem-binding Ab titers as compared to head Ab titers, indicating that the monomeric and mosaic nature of 3HA-np elicit cross-reactive Abs. Our results suggest that exposure of the hidden conserved epitope by monomer-displaying nanoparticles is a promising approach to generate a universal influenza vaccine.