The efficacy of anti-cancer therapies depends on the genomic composition of the tumor, its microenvironment, spatial organization, and intra-tumor heterogeneity. B cell lymphomas are a heterogeneous group of tumors emerging from B cells at different stages of differentiation and exhibiting tumor-specific interactions with the tumor microenvironment. Thus, to measure response to therapy in lymphoma, it is critical to preserve the tumor composition and functional interactions among immune cells. Here, we developed a platform to maintain small fragments of human lymphoma tissue in culture for several days, and use them to test response to therapies. We collected 25 patient samples representative of different lymphoma subtypes, and established ex vivo tissue fragments that retained histological, cellular, and molecular characteristics of the original tissue, here referred to as lymphomoids. Using lymphomoids, we tested sensitivity to several clinically approved small molecule inhibitors in parallel and examined tissue remodeling upon treatment. Importantly, when this information was available, we showed that sensitivity to therapy observed in lymphomoids was consistent with patient's response in the clinic. Lymphomoids are an innovative tool to assess treatment efficacy in clinically relevant contexts and could be used to uncover novel aspects of lymphoma biology.

Abstract Melanoma is a benchmark of major clinical significance for cancer development with greater aggressiveness in the male than the female population. Surprisingly little is known on the role of androgen receptor (AR) signaling in the disease. Irrespectively of expression levels, genetic and pharmacological suppression of AR activity in a large panel of melanoma cells, derived from both male and female patients, suppresses proliferation and self-renewal potential while, conversely, increased AR expression or ligand stimulation enhance proliferation. AR gene silencing in multiple melanoma lines elicits a shared gene expression signature related to interferon- and inflammatory cytokines signaling with an inverse association with DNA repair-associated genes, which is significantly linked with better patients’ survival. AR plays an essential function in maintenance of genome integrity: in both cultured melanoma cells and tumors, loss of AR activity leads to chromosomal DNA breakage, leakage into the cytoplasm, and stimulator of interferon genes (STING) activation. In vivo , reduced tumorigenesis resulting from AR gene silencing or pharmacological inhibition is associated with intratumor macrophage infiltration and, in an immune competent mouse model, cytotoxic T cell activation. Although at different levels, androgens are produced in both male and female individuals and AR targeting provides an attractive therapy approach for improved management of melanoma irrespective of patients’ sex and gender. Significance The study uncovers an essential role of androgen receptor (AR) signaling in melanoma cell expansion and tumorigenesis, with loss of AR activity inducing cellular senescence, genomic DNA breakage, a STING dependent inflammatory cascade and immune cells recruitment. Use of AR inhibitors as growth inhibitory and DNA damaging agents in melanoma cells can provide an attractive venue for new combination approaches for management of the disease.

The efficacy of anti-cancer therapies depends on the genomic composition of the tumor, its microenvironment, spatial organization, and intra-tumor heterogeneity. B-cell lymphomas are a heterogeneous group of tumors emerging from B-cells at different stages of differentiation and exhibiting tumor-specific interactions with the tumor microenvironment. Thus, the effect of drug treatments can be influenced by the tumor composition and functional interactions among immune cells. Here, we develop a platform to maintain small fragments of human lymphoma tissue in culture for several days, and use them to test response to small molecules. We collect 27 patient samples representative of different lymphoma subtypes, and establish ex vivo tissue fragments that retain histological, cellular, and molecular characteristics of the original tissue, here referred to as lymphomoids. Using lymphomoids, we test sensitivity to several clinically approved drugs in parallel and examine tissue remodeling upon treatment. Moreover, when this information is available, we show that the effect of the inhibitors observed in lymphomoids is consistent with the patients' response in the clinic. Thus, lymphomoids represent an innovative ex vivo model to assess the effect of anti-cancer therapies while preserving the tissue structure and its components. Choosing the most effective anti-cancer therapy is difficult due to the high degree of tumour cell and tumour microenvironment heterogeneity. Here, the authors develop a platform for the generation of patient-derived B-cell lymphoma models (termed lymphomoids) which maintain the lymphoid tissue architecture, to enable drug screening.