Abstract The highly immunosuppressive tumor microenvironment (TME) in solid tumors often dampens the efficacy of immunotherapy. In this study, bacterial outer membrane vesicles (OMVs) are demonstrated as powerful immunostimulants for TME reprogramming. To overcome the obstacles of antibody‐dependent clearance and high toxicity induced by OMVs upon intravenous injection (a classic clinically relevant delivery mode), calcium phosphate (CaP) shells are employed to cover the surface of OMVs, which enables potent OMV‐based TME reprograming without side effects. Meanwhile, the pH‐sensitive CaP shells facilitate the neutralization of acidic TME, leading to highly beneficial M2‐to‐M1 polarization of macrophages for improved antitumor effect. Moreover, the outer shells can be integrated with functional components like folic acid or photosensitizer agents, which facilitates the use of the OMV‐based platform in combination therapies for a synergic therapeutic effect.

Background Although inflammation has been linked to nonalcoholic fatty liver disease (NAFLD), most studies have focused only on a single indicator, leading to inconsistent results. Therefore, a large prospective study that includes a variety of well-documented single and composite indicators of inflammation is needed. This study aimed to thoroughly investigate the potential associations between different systemic inflammatory indicators and NAFLD in the UK Biobank cohort. Methods After excluding ineligible participants, 378,139 individuals were included in the study. Associations between systemic inflammatory indicators and hepatic steatosis were assessed using multivariate logistic regression. The relationships between systemic inflammatory indicators and nonalcoholic fatty liver disease were analysed using Cox proportional hazards models, and nonlinear associations were investigated using restricted cubic splines. Results According to the cross-sectional analysis, systemic inflammatory indicators significantly correlated with hepatic steatosis. Over a median follow-up of 13.9 years, 4,145 individuals developed NAFLD. After sufficient adjustment for confounding factors, CRP levels were found to be nonlinearly positively associated with NAFLD risk ( P <0.001), representing the strongest correlation among the tested relationships; lymphocyte count and the LMR showed an L-shaped correlation; monocyte count and neutrophil count showed a linear positive correlation (all P < 0.001); and the NLR, PLR, and SII showed a U-shaped correlation (all P <0.001). Conclusions Multiple systemic inflammatory indicators are strongly associated with the development of NAFLD, and aggressive systemic inflammation management may have a favourable impact on reducing the burden of NAFLD; further randomized controlled studies are needed.

The binding of viruses to host-entry factor receptors is an essential step for viral infection. Many studies have shown that macrophages can internalize viruses and degrade them in lysosomes for clearance in vivo. Inspired by these natural behaviors and using SARS-CoV-2 as a testbed, we harvest lysosomes from activated macrophages and anchor the protein-receptor ACE2 as bait, thus constructing a lysosomal "TRAP" (lysoTRAP) that selectively captures, internalizes, and eventually degrades SARS-CoV-2. Through experiments with cells, female mice, female hamsters, and human lung organoids, we demonstrate that lysoTRAP effectively clears SARS-CoV-2. Importantly, unlike therapeutic agents targeting SARS-CoV-2 spike protein, lysoTRAP remains effective against nine pseudotyped variants and the authentic Omicron variant, demonstrating its resistance to SARS-CoV-2 mutations. In addition to the protein-receptor ACE2, we also extend lysoTRAP with the saccharide-receptor sialic acid and verify its excellent antiviral effect against H1N1, highlighting the flexibility of our "TRAP" platform in fighting against various viruses. Inspired by the idea of mimicking virus entry to host cells and macrophage-mediated virus clearance, the authors developed a lysosomal "TRAP", which could efficiently capture, internalize, and degrade viruses and variants.

Parkinson’s disease (PD) is an age-dependent neurodegenerative disorder characterized by the loss of substantia nigra dopaminergic (DAergic) neurons in ventral midbrain (MB). Identification of interactions between aging and the known risk variants is crucial to understanding the etiology of PD. Recessive mutations in SYNJ1 have recently been linked to familial early-onset atypical Parkinsonism. We now show an age-dependent decline of SYNJ1 expression in the striatum as well as in striatal DAergic terminals of aged mice. Heterozygous deletion of SYNJ1 in mice causes selective elevation of PIP2 in the MB, and manipulation of PIP2 levels also impairs synaptic vesicle recycling preferentially in MB neurons. SYNJ1+/- mice display progressive PD-like behavioral alterations and DAergic terminal degeneration. Furthermore, we found down-regulation of human SYNJ1 transcripts in a subset of sporadic PD brains, corroborating the role of an age-dependent decrease in SYNJ1 in predisposing DAergic neuron vulnerability and PD pathogenesis.

HIV-1 envelope glycoprotein (Env) conformation substantially impacts antibody-dependent cellular cytotoxicity (ADCC). Envs from primary HIV-1 isolates adopt a prefusion closed conformation, which is targeted by broadly-neutralizing antibodies (bnAbs). CD4 binding drives Env into more open conformations, which are recognized by non-neutralizing Abs (nnAbs). To better understand Env-Ab and Env-CD4 interaction in CD4+ T cells infected with HIV-1, we simultaneously measured antibody binding and HIV-1 mRNA expression using multiparametric flow cytometry and RNA-flow fluorescent in situ hybridization (FISH) techniques. We observed that env mRNA is almost exclusively expressed by HIV-1 productively-infected cells that already downmodulated CD4. This suggest that CD4 downmodulation precedes env mRNA expression. Consequently, productively-infected cells express closed Envs on their surface, which renders them resistant to nnAbs. Cells recognized by nnAbs were all env mRNA negative, indicating Ab binding through shed gp120 or virions attached to their surface. Consistent with these findings, treatment of HIV-1 infected humanized mice with the ADCC mediating nnAb A32 failed to lower viral replication or reduce the size of the viral reservoir. These findings confirm the resistance of productively-infected CD4+ T cells to nnAbs-mediated ADCC and question the rationale of immunotherapy approaches using this strategy.