IL-17 and IL-22 have been shown to increase protection against certain bacteria and fungal pathogens in experimental models. However, no human studies have demonstrated a crucial role of IL-17 and IL-22 in protection against infections. We show here that Leishmania donovani, which can cause the lethal visceral disease Kala Azar (KA), stimulates the differentiation of Th17 cells, which produce IL-17, IL-22, and IFN-gamma. Analysis of Th1, Th2, and Th17 cytokine responses by cultured PBMCs from individuals in a cohort of subjects who developed KA or were protected against KA during a severe outbreak showed that IL-17 and IL-22 were strongly and independently associated with protection against KA. Our results suggest that, along with Th1 cytokines, IL-17 and IL-22 play complementary roles in human protection against KA, and that a defect in Th17 induction may increase the risk of KA.

Abstract Cardiopharyngeal mesoderm contributes to the formation of the heart and head muscles. However, the mechanisms governing cardiopharyngeal mesoderm specification remain unclear. Here, we reproduce cardiopharyngeal mesoderm specification towards cardiac and skeletal muscle lineages with gastruloids from mouse embryonic stem cells. By conducting a comprehensive temporal analysis of cardiopharyngeal mesoderm development and differentiation in gastruloids compared to mouse embryos, we present the evidence for skeletal myogenesis in gastruloids. We identify different subpopulations of cardiomyocytes and skeletal muscles, the latter of which most likely correspond to different states of myogenesis with “head-like” and “trunk-like” skeletal myoblasts. In this work, we unveil the potential of gastruloids to undergo specification into both cardiac and skeletal muscle lineages, allowing the investigation of the mechanisms of cardiopharyngeal mesoderm differentiation in development and how this could be affected in congenital diseases.

Perturbation of addition of second heart field (SHF) cardiac progenitor cells to the poles of the heart tube results in congenital heart defects (CHD). The transcriptional programs and upstream regulatory events operating in different subpopulations of the SHF remain unclear. Here, we profile the transcriptome and chromatin accessibility of anterior and posterior SHF sub-populations at genome-wide levels and demonstrate that Hoxb1 negatively regulates differentiation in the posterior SHF. Spatial mis-expression of Hoxb1 in the anterior SHF results in hypoplastic right ventricle. Activation of Hoxb1 in embryonic stem cells arrests cardiac differentiation, whereas Hoxb1-deficient embryos display premature cardiac differentiation. Moreover, ectopic differentiation in the posterior SHF of embryos lacking both Hoxb1 and its paralog Hoxa1 results in atrioventricular septal defects. Our results show that Hoxb1 plays a key role in patterning cardiac progenitor cells that contribute to both cardiac poles and provide new insights into the pathogenesis of CHD.

Summary Transforming Growth Factor-Beta-Activated Kinase 1 (TAK1/MAP3K7), along with its upstream regulators TAK1-Binding Protein 2 (TAB2) and the catalytic alpha-subunit of Protein Kinase A (PKA-Cα/PRKACA), has been identified as a pivotal player in regulation of developmental processes. Haploinsufficiency of TAB2 causes Congenital Heart Disease (CHD) and rare variants in PKA-Cα and TAK1 cause cardioacrofacial dysplasia (CAFD), and Frontometaphyseal Dysplasia (FMD) and cardiospondylocarpofacial syndrome (CSCFS), respectively, rare multisystem syndromes, where CHD may appear in the clinical spectrum. We hypothesized that TAK1 plays a significant role in heart development and CHD and addressed this by genetic analysis in CHD patient cohorts and experiments in cell and animal models. Exome sequencing data from 1,471 CHD patients with extracardiac anomalies (syndromic CHD, sCHD), 2,405 patients with nonsyndromic CHD (nsCHD) and 45,082 controls showed increased burden of rare TAB2 and TAK1 variants in sCHD, but not in nsCHD. Detailed characterization of tak1 -/- and tab2 -/- zebrafish mutants revealed cardiac defects (dilated atrium, trabeculation defects, tachycardia and reduced contractility) as well as extracardiac developmental anomalies. RNA sequencing of tak1 -/- mutant hearts showed downregulation of genes encoding core cardiac transcription factors, sarcomeric proteins and extracellular matrix proteins. Experiments with cell cultures and analysis of zebrafish larvae and gastruloids indicated that TAK1 via TAB2 and PKA-Cα is activated at the primary cilium during cardiomyogenesis and that TAK1 activation at this site is enhanced by cardiomyogenic signaling molecules, including ligands of the TGFB/BMP superfamily. Consistent with these findings, CRISPR/Cas9-mediated editing of TAK1 or administration of small molecule inhibitors targeting TAK1 inhibited ciliary signaling and cardiomyocyte differentiation in vitro , while FMD-causing mutations in TAK1 reduced its ciliary localization. In conclusion, our data establishes a central role for TAK1 and its upstream regulators in cardiac development and syndromic CHD, coordinated via the primary cilium.

Abstract Cardiopharyngeal mesoderm contributes to the formation of the heart and head muscles. However, the mechanisms governing cardiopharyngeal mesoderm specification remain unclear. Indeed, there is a lack of an in vitro model replicating the differentiation of both heart and head muscles to study these mechanisms. Such models are required to allow live-imaging and high throughput genetic and drug screening. Here, we show that the formation of self-organizing or pseudo-embryos from mouse embryonic stem cells (mESCs), also called gastruloids, reproduces cardiopharyngeal mesoderm specification towards cardiac and skeletal muscle lineages. By conducting a comprehensive temporal analysis of cardiopharyngeal mesoderm establishment and differentiation in gastruloids and comparing it to mouse embryos, we present the first evidence for skeletal myogenesis in gastruloids. By inferring lineage trajectories from the gastruloids single-cell transcriptomic data, we further suggest that heart and head muscles formed in gastruloids derive from cardiopharyngeal mesoderm progenitors. We identify different subpopulations of cardiomyocytes and skeletal muscles, which most likely correspond to different states of myogenesis with “head-like” and “trunk-like” skeletal myoblasts. These findings unveil the potential of mESC-derived gastruloids to undergo specification into both cardiac and skeletal muscle lineages, allowing the investigation of the mechanisms of cardiopharyngeal mesoderm differentiation in development and how this could be affected in congenital diseases.