Abstract Spatially-resolved genomic technologies have allowed us to study the physical organization of cells and tissues, and promise an understanding of the local interactions between cells. However, it remains difficult to precisely align spatial observations across slices, samples, scales, individuals, and technologies. Here, we propose a probabilistic model that aligns a set of spatially-resolved genomics and histology slices onto a known or unknown common coordinate system into which the samples are aligned both spatially and in terms of the phenotypic readouts (e.g., gene or protein expression levels, cell density, open chromatin regions). Our method consists of a two-layer Gaussian process: the first layer maps the observed samples’ spatial locations into a common coordinate system, and the second layer maps from the common coordinate system to the observed readouts. Our approach also allows for slices to be mapped to a known template coordinate space if one exists. We show that our registration approach enables complex downstream spatially-aware analyses of spatial genomics data at multiple resolutions that are impossible or inaccurate with unaligned data, including an analysis of variance, differential expression across the z -axis, and association tests across multiple data modalities.

Abstract Spatial genomic technologies characterize the relationship between the structural organization of cells and their cellular state. Despite the availability of various spatial transcriptomic and proteomic profiling platforms, these experiments remain costly and labor-intensive. Traditionally, tissue slicing for spatial sequencing involves parallel axis-aligned sections, often yielding redundant or correlated information. We propose structured batch experimental design , a method that improves the cost efficiency of spatial genomics experiments by profiling tissue slices that are maximally informative, while recognizing the destructive nature of the process. Applied to two spatial genomics studies—one to construct a spatially-resolved genomic atlas of a tissue and another to localize a region of interest in a tissue, such as a tumor—our approach collects more informative samples using fewer slices compared to traditional slicing strategies. This methodology offers a foundation for developing robust and cost-efficient design strategies, allowing spatial genomics studies to be deployed by smaller, resource-constrained labs.

Spatial navigation and orientation are emerging as promising markers for altered cognition in prodromal Alzheimer's disease, and even in cognitively normal individuals at risk for Alzheimer's disease. The different APOE gene alleles confer various degrees of risk. The APOE2 allele is considered protective, APOE3 is seen as control, while APOE4 carriage is the major known genetic risk for Alzheimer's disease. We have used mouse models carrying the three humanized APOE alleles and tested them in a spatial memory task in the Morris water maze. We introduce a new metric, the absolute winding number, to characterize the spatial search strategy, through the shape of the swim path. We show that this metric is robust to noise, and works for small group samples. Moreover, the absolute winding number better differentiated APOE3 carriers, through their straighter swim paths relative to both APOE2 and APOE4 genotypes. Finally, this novel metric was sensitive to sex differences, supporting increased vulnerability in females. We hypothesized differences in spatial memory and navigation strategies are linked to differences in brain networks, and showed that different genotypes have different reliance on the hippocampal and caudate putamen circuits, pointing to a role for white matter connections. Moreover, differences were most pronounced in females. This departure from a hippocampal centric to a brain network approach may open avenues for identifying regions linked to increased risk for Alzheimer's disease, before overt disease manifestation. Further exploration of novel biomarkers based on spatial navigation strategies may enlarge the windows of opportunity for interventions. The proposed framework will be significant in dissecting vulnerable circuits associated with cognitive changes in prodromal Alzheimer's disease.

Various decisions concerning the management, display, and diagnostic use of electronic health records (EHR) data can be automated using machine learning (ML). We describe how ML is currently applied to EHR data and how it may be applied in the near future. Both benefits and shortcomings of ML are considered.

Gaussian processes (GPs) are a versatile nonparametric model for nonlinear regression and have been widely used to study spatiotemporal phenomena. However, standard GPs offer limited interpretability and generalizability for datasets with naturally occurring hierarchies. With large-scale, rapidly-updating electronic health record (EHR) data, we want to study patient trajectories across diverse patient cohorts while preserving patient subgroup structure. In this work, we partition our cohort of over 2000 COVID-19 patients by sex and ethnicity. We develop and apply a hierarchical Gaussian process and a mixture of experts (MOE) hierarchical GP model to fit patient trajectories on clinical markers of disease progression. A case study for albumin, an effective predictor of COVID-19 patient outcomes, highlights the predictive performance of these models. These hierarchical spatiotemporal models of EHR data bring us a step closer toward our goal of building flexible approaches to capture patient data that can be used in real-time systems * .

ABSTRACT Investigating the relationship, particularly the lead–lag effect, between time series is a common question across various disciplines, especially when uncovering biological processes. However, analyzing time series presents several challenges. Firstly, due to technical reasons, the time points at which observations are made are not at uniform intervals. Secondly, some lead–lag effects are transient, necessitating time-lag estimation based on a limited number of time points. Thirdly, external factors also impact these time series, requiring a similarity metric to assess the lead–lag relationship. To counter these issues, we introduce a model grounded in the Gaussian process, affording the flexibility to estimate lead–lag effects for irregular time series. In addition, our method outputs dissimilarity scores, thereby broadening its applications to include tasks such as ranking or clustering multiple pairwise time series when considering their strength of lead–lag effects with external factors. Crucially, we offer a series of theoretical proofs to substantiate the validity of our proposed kernels and the identifiability of kernel parameters. Our model demonstrates advances in various simulations and real-world applications, particularly in the study of dynamic chromatin interactions, compared to other leading methods.

Spatial omics technologies revolutionize our view of biological processes within tissues. However, existing methods fail to capture localized, sharp changes characteristic of critical events (e.g. tumor development). Here, we present StarTrail, a novel gradient based method that powerfully defines rapidly changing regions and detects "cliff genes", genes exhibiting drastic expression changes at highly localized or disjoint boundaries. StarTrail, the first to leverage spatial gradients for spatial omics data, also quantifies directional dynamics. Across multiple datasets, StarTrail accurately delineates boundaries (e.g., brain layers, tumor-immune boundaries), and detects cliff genes that may regulate molecular crosstalk at these biologically relevant boundaries but are missed by existing methods. For instance, StarTrail precisely pinpointed the cancer-immune interface in a HER2+ breast cancer dataset, unveiled key cliff genes including a potential prognostic biomarker IGSF3, highlighting NK-, B-cell mediated immunity, and B cell receptor signaling pathways missed by all spatial variable gene methods attempted. StarTrail, filling important gaps in current literature, enables deeper insights into tissue spatial architecture.

Spatially-resolved genomic technologies have shown promise for studying the relationship between the structural arrangement of cells and their functional behavior. While numerous sequencing and imaging platforms exist for performing spatial transcriptomics and spatial proteomics profiling, these experiments remain expensive and labor-intensive. Thus, when performing spatial genomics experiments using multiple tissue slices, there is a need to select the tissue cross sections that will be maximally informative for the purposes of the experiment. In this work, we formalize the problem of experimental design for spatial genomics experiments, which we generalize into a problem class that we call structured batch experimental design. We propose approaches for optimizing these designs in two types of spatial genomics studies: one in which the goal is to construct a spatially-resolved genomic atlas of a tissue and another in which the goal is to localize a region of interest in a tissue, such as a tumor. We demonstrate the utility of these optimal designs, where each slice is a two-dimensional plane, on several spatial genomics datasets.