ATTR amyloidosis is a degenerative disorder characterized by the systemic deposition of the protein transthyretin. These amyloid aggregates of transthyretin (ATTR) can deposit in different parts of the body causing diverse clinical manifestations. Our laboratory aims to investigate a potential relationship between the different genotypes, organ of deposition, clinical phenotypes, and the structure of ATTR fibrils. Using cryo-electron microscopy, we have recently described how the neuropathic related mutations ATTRv-I84S and ATTRv-V122∆ can drive structural polymorphism in

The microtubule-associated protein tau is implicated in neurodegenerative diseases characterized by amyloid formation. Mutations associated with frontotemporal dementia increase tau aggregation propensity and disrupt its endogenous microtubule-binding activity. The structural relationship between aggregation propensity and biological activity remains unclear. We employed a multi-disciplinary approach, including computational modeling, NMR, cross-linking mass spectrometry, and cell models to design tau sequences that stabilize its structural ensemble. Our findings reveal that substitutions near the conserved 'PGGG' beta-turn motif can modulate local conformation, more stably engaging in interactions with the 306 VQIVYK 311 amyloid motif to decrease aggregation in vitro and in cells. Designed tau sequences maintain microtubule binding and explain why 3R isoforms of tau exhibit reduced pathogenesis over 4R isoforms. We propose a simple mechanism to reduce the formation of pathogenic species while preserving biological function, offering insights for therapeutic strategies aimed at reducing protein misfolding in neurodegenerative diseases.

Abstract Amyloid deposition of the microtubule-associated protein tau is a unifying theme in a multitude of neurodegenerative diseases. Disease-associated missense mutations in tau are associated with frontotemporal dementia (FTD) and enhance tau aggregation propensity. However, the molecular mechanism of how mutations in tau promote tau assembly into amyloids remains obscure. There is a need to understand how tau folds into pathogenic conformations to cause disease. Here we describe the structural mechanism for how an FTD-tau S320F mutation drives spontaneous aggregation. We use recombinant protein and synthetic peptide systems, computational modeling, cross-linking mass spectrometry, and cell models to investigate the mechanism of spontaneous aggregation of the S320F FTD-tau mutant. We discover that the S320F mutation drives the stabilization of a local hydrophobic cluster which allosterically exposes the 306 VQIVYK 311 amyloid motif. We identify a suppressor mutation that reverses the S320F aggregation phenotype through the reduction of S320F-based hydrophobic clustering in vitro and in cells. Finally, we use structure-based computational design to engineer rapidly aggregating tau sequences by optimizing nonpolar clusters in proximity to the S320 site revealing a new principle that governs the regulation of tau aggregation. We uncover a mechanism for regulating aggregation that balances transient nonpolar contacts within local protective structures or in longer-range interactions that sequester amyloid motifs. The introduction of a pathogenic mutation redistributes these transient interactions to drive spontaneous aggregation. We anticipate deeper knowledge of this process will permit control of tau aggregation into discrete structural polymorphs to aid design of reagents that can detect disease-specific tau conformations.