ABSTRACT Genome-wide association studies (GWAS) have identified genetic variants in SEC16 homolog B ( SEC16B ) locus to be associated with obesity and body mass index (BMI) in various populations. SEC16B encodes a scaffold protein located at endoplasmic reticulum (ER) exit sites that is implicated to participate in the trafficking of COPII vesicles in mammalian cells. However, the function of SEC16B in vivo , especially in lipid metabolism, has not been investigated. Here we demonstrated that intestinal SEC16B is required for dietary lipid absorption in mice. We showed that Sec16b intestinal knockout (IKO) mice, especially female mice, were protected from HFD-induced obesity. Loss of SEC16B in intestine dramatically reduced postprandial serum triglyceride output upon intragastric lipid load or during overnight fasting and high-fat diet (HFD) refeeding. Further studies showed that intestinal SEC16B deficiency impaired apoB lipidation and chylomicron secretion. These results revealed that SEC16B plays important roles in dietary lipid absorption, which may shed light on the association between variants in SEC16B and obesity in human.

Bladder carcinoma (BC) accounts for > 90% of all urothelial cancers. Pathological diagnosis through cytoscopic biopsy is the gold standard, whereas non-invasive diagnostic tools remain lacking. The "Atyp.C" parameter of the Sysmex UF-5000 urine particle analyzer represents the ratio of nucleus to cytoplasm and can be employed to detect urinary atypical cells. The present study examined the association between urinary Atyp.C values and BC risk. This two-center, retrospective case-control study identified clinical primary or newly recurrent BC (study period, 2022-2023; n = 473) cases together with controls with urinary tract infection randomly matched by age and sex (1:1). Urinary sediment differences were compared using non-parametric tests. The correlations between urinary Atyp.C levels and BC grade or infiltration were analyzed using Spearman's rank correlation. The BC risk factor odds ratio of Atyp.C was calculated using conditional logistic regression, and potential confounder effects were adjusted using stepwise logistic regression (LR). Primary risk factors were identified by stratified analysis according to pathological histological diagnosis. The mean value of urinary Atyp.C in BC cases (1.30 ± 3.12) was 8.7 times higher than that in the controls (0.15 ± 0.68; P < 0.001). Urinary Atyp.C values were positively correlated with BC pathological grade and invasion (r = 0.360, P < 0.001; r = 0.367, P < 0.001). Urinary Atyp.C was an independent risk factor for BC and closely related with BC pathological grade and invasion. Elevated urinary Atyp.C values was an independent risk factor for BC. Our findings support the use of Atyp.C as a marker that will potentially aid in the early diagnosis and long-term surveillance of new and recurrent BC cases.

Abstract The ability to precisely control the human gut microbiome’s composition, metabolic networks, and host interactions would revolutionize medicine and how we treat human disease. Microbiome remodeling approaches such as probiotics, prebiotics, antibiotics, and fecal microbiota transplantation are global perturbations with consequences that are difficult to predict. Lysins are enzymes produced by bacteriophages and bacteria that have exceptional specificity to lyse bacterial cells and could be applied for targeted microbiome remodeling. In this work we demonstrate the ability of lysins to target diverse human gut commensal bacteria, how domain recombination can give rise to chimeric lysins with altered species preferences, and how engineered lysins can directly remodel the structure and function of synthetic human gut microbiomes. Lysins represent a general platform that can be rapidly tailored through protein engineering to control complex microbial ecosystems.

Chronic Hepatitis B Virus (HBV) infection is strongly associated with the progression of liver fibrosis, cirrhosis and hepatocellular carcinoma. Despite intensive study, the detailed mechanisms leading to HBV induced liver disease have not been fully elucidated. Previously, we reported a mosaic distribution of viral antigens and nucleic acids at single-cell level in liver tissues of chronic hepatitis B (CHB) patients and proposed a three-stage model of HBV infection in vivo. Here, we explored whether the different stages at cellular level is functionally linked with fibrogenesis. We observed a tight spatial relationship between the invasion of collagen fibers and transitions from S-rich to DNA-rich stage. While S-rich cells mainly localized within minimally fibrotic tissue, DNA-rich cells were often closely surrounded by a milieu of stiffened extracellular matrix (ECM). cDNA microarray and subsequent validation analyses revealed that S-rich cells manifested elevated ribosomal proteins and oxidative phosphorylation genes in a disease phase-dependent manner. On the other hand, DNA-rich cells exhibited gradually deteriorated expression of hepatocyte-specific antigen and transcriptional regulator in parallel with the progression of hepatic fibrosis. Finally, during fibrogenesis, inflammatory genes such as IP-10 were found to be expressed in both portal infiltrated cells and surrounding parenchymal cells which resulted in suppressed antigen expression. Taken together, we propose that liver inflammation and accompanying fibrogenesis is spatially and functionally linked with the transition of virological stages at cellular level. These transitions occur possibly due to an altered hepatocyte transcription profile in response to a transformed ECM environment. The collective viral and host activities shape the histological alterations and progression of liver disease during CHB infection.