Ferroptosis is an iron-dependent form of regulated necrosis associated with lipid peroxidation. Despite its key role in the inflammatory outcome of ferroptosis, little is known about the molecular events leading to the disruption of the plasma membrane during this type of cell death. Here we show that a sustained increase in cytosolic Ca2+ is a hallmark of ferroptosis that precedes complete bursting of the cell. We report that plasma membrane damage leading to ferroptosis is associated with membrane nanopores of a few nanometers in radius and that ferroptosis, but not lipid peroxidation, can be delayed by osmoprotectants. Importantly, Ca2+ fluxes during ferroptosis induce the activation of the ESCRT-III-dependent membrane repair machinery, which counterbalances the kinetics of cell death and modulates the immunological signature of ferroptosis. Our findings with ferroptosis provide a unifying concept that sustained increase of cytosolic Ca2+ prior to plasma membrane rupture is a common feature of regulated types of necrosis and position ESCRT-III activation as a general protective mechanism in these lytic cell death pathways.

Abstract Ferroptosis is a form of regulated necrosis characterized by the iron-dependent accumulation of lipid peroxides in cell membranes. However, how lipid oxidation affects biophysical properties of cellular membranes and how these changes contribute to the opening of membrane pores are major questions in the field. Therefore, understanding the interplay between oxidized phospholipids and alterations in membrane biophysical properties is essential to unravel the underlying mechanisms of ferroptosis. Here, we characterized membrane alterations upon lipid oxidation in in vitro model membrane systems using lipid vesicles and supported lipid bilayers (SLBs) in which lipid oxidation was induced by Fenton reactions. We find that vesicle permeabilization kinetically correlates with the appearance of malondialdehyde (MDA), a product of lipid oxidation. Lipid oxidation also alters the lateral organization of SLBs exhibiting liquid-ordered (Lo)/liquid-disordered (Ld) phase coexistence, reducing the lipid mismatch between domains and decreasing the circularity of Lo domains, indicating a decrease in line tension at the phase boundaries. Further characterization of SLBs by force spectroscopy reveals a significant reduction in the average membrane breakthrough force upon oxidation, indicating changes in lipid bilayer organization that make it more susceptible to permeabilization. Our findings suggest that lipid oxidation induces strong changes in membrane lipid interactions and in the mechanical properties of membranes leading to reduced tension in the permeabilized state of the bilayer, which promotes membrane pore formation.

Ferroptosis is an iron-dependent form of regulated necrosis associated with lipid peroxidation. Despite its key role in the inflammatory outcome of ferroptosis, little is known about the molecular events leading to the disruption of the plasma membrane during this type of cell death. Here we show that a sustained increase in cytosolic Ca2+ is a hallmark of ferroptosis that precedes complete bursting of the cell. We report that plasma membrane damage leading to ferroptosis is associated with membrane nanopores of few nanometers in radius and that ferroptosis, but not lipid peroxidation, can be delayed by osmoprotectants. Importantly, Ca2+ fluxes during ferroptosis correlate with the activation of ESCRT-III-mediated membrane repair, which counterbalances the kinetics of cell death and modulates the inflammatory signature of ferroptosis. Our findings with ferroptosis provide a unifying concept that sustained high levels of cytosolic Ca2+ prior to plasma membrane disruption are a common feature of regulated necrosis and position ESCRT-III as a general protective mechanism in these inflammatory cell death pathways.