Chromosome conformation capture (3C) provides an adaptable tool for studying diverse biological questions. Current 3C methods provide either low-resolution interaction profiles across the entire genome, or high-resolution interaction profiles at up to several hundred loci. All 3C methods are affected to varying degrees by inefficiency, bias and noise. As such, generation of reproducible high-resolution interaction profiles has not been achieved at scale. To overcome this barrier, we systematically tested and improved upon current methods. We show that isolation of 3C libraries from intact nuclei, as well as shortening and titration of enrichment oligonucleotides used in high-resolution methods reduces noise and increases on-target sequencing. We combined these technical modifications into a new method Nuclear-Titrated (NuTi) Capture-C, which provides a >3-fold increase in informative sequencing content over current Capture-C protocols. Using NuTi Capture-C we target 8,061 promoters in triplicate, demonstrating that this method generates reproducible high-resolution genome-wide 3C interaction profiles at scale.

Abstract Retroviral restriction factors are important regulators of viral infection, targeting vulnerable steps of the virus lifecycle; steps that are also targeted by antiviral drugs. It has become clear that the route of cellular infection can alter the sensitivity of HIV-1 to these agents. Using CRISPR-Cas9 edited pluripotent stem cell-derived macrophages, we have explored the potential of a modified restriction factor (human TRIMCyp) to inhibit HIV-1 replication in both cell free and cell-cell infection models. We show that the expression of TRIMCyp from the endogenous TRIM5α locus potently restricts infection by cell-free HIV-1. Our results also show the importance of the human cyclophilin A-HIV-1 capsid interaction for viral escape from restriction by native human TRIM5α, highlighting the evolutionary interplay between virus and this host restriction factor. However, when co-cultured with infected T cells, stem cell-derived macrophages are primarily infected by fusion between the cells. We have termed infected cells that result from these fusions heterocytia, and show that their formation overcomes multiple restriction factors and the reverse transcriptase inhibitor AZT. Importance As sentinels of the immune system, macrophages are relatively resistant to infection by pathogens such as HIV-1. However, infected macrophages are found in infected patients and they play key roles in the pathogenesis of the disease as well as being a component of the viral reservoir that must be targeted before treatment can become cure. In this article, we show that some of the mechanisms by which macrophages restrict HIV-1 can be overcome through a recently described cell-cell interaction leading to cell-cell fusion. We also highlight an evolutionary battle between virus and host and show how the virus has co-opted a host protein to protect it from destruction by an antiviral mechanism. These two key findings suggest potential novel treatment strategies that may reduce the viral reservoir and help our natural defences take back control from the virus.

Genome-wide association studies (GWAS) have identified over 150,000 links between common genetic variants and human traits or complex diseases. Over 80% of these associations map to polymorphisms in non-coding DNA. Therefore, the challenge is to identify disease-causing variants, the genes they affect, and the cells in which these effects occur. We have developed a platform using ATAC-seq, DNaseI footprints, NG Capture-C and machine learning to address this challenge. Applying this approach to red blood cell traits identifies a significant proportion of known causative variants and their effector genes, which we show can be validated by direct in vivo modelling.