KX
Kun Xiong
Author with expertise in Stochasticity in Gene Regulatory Networks
Achievements
This user has not unlocked any achievements yet.
Key Stats
Upvotes received:
0
Publications:
8
(38% Open Access)
Cited by:
8
h-index:
18
/
i10-index:
31
Reputation
Biology
< 1%
Chemistry
< 1%
Economics
< 1%
Show more
How is this calculated?
Publications
0

High transcriptional error rates vary as a function of gene expression level

Kendra Meer et al.Feb 19, 2019
Errors in gene transcription can be costly, and organisms have evolved to prevent their occurrence or mitigate their costs. The simplest interpretation of the drift barrier hypothesis suggests that species with larger population sizes would have lower transcriptional error rates. However, Escherichia coli seems to have a higher transcriptional error rate than species with lower effective population sizes, e.g. Saccharomyces cerevisiae . This could be explained if selection in E. coli were strong enough to maintain adaptations that mitigate the consequences of transcriptional errors through robustness, on a gene by gene basis, obviating the need for low transcriptional error rates and associated costs of global proofreading. Here we note that if selection is powerful enough to evolve local robustness, selection should also be powerful enough to locally reduce error rates. We therefore predict that transcriptional error rates will be lower in highly abundant proteins on which selection is strongest. However, we only expect this result when error rates are high enough to significantly impact fitness. As expected, we find such a relationship between expression and transcriptional error rate for non C➔U errors in E. coli (especially G➔A), but not in S. cerevisiae . We do not find this pattern for C➔U changes in E. coli , presumably because most deamination events occurred during sample preparation, but do for C➔U changes in S. cerevisiae , supporting the interpretation that C➔U error rates estimated with an improved protocol, and which occur at rates comparable to E. coli non C➔U errors, are biological.
0

Drift barriers to quality control when genes are expressed at different levels

Kun Xiong et al.Jun 12, 2016
Gene expression is imperfect, sometimes leading to toxic products. Solutions take two forms: globally reducing error rates, or ensuring that the consequences of erroneous expression are relatively harmless. The latter is optimal, but because it must evolve independently at so many loci, it is subject to a stringent "drift barrier" - a limit to how weak the effects of a deleterious mutation s can be, while still being effectively purged by selection, expressed in terms of the population size N of an idealized population such that purging requires s < -1/N. In previous work, only large populations evolved the optimal local solution, small populations instead evolved globally low error rates, and intermediate populations were bistable, with either solution possible. Here we take into consideration the fact that the effectiveness of purging varies among loci, because of variation in gene expression level and variation in the intrinsic vulnerabilities of different gene products to error. The previously found dichotomy between the two kinds of solution breaks down, replaced by a gradual transition as a function of population size. In the extreme case of a small enough population, selection fails to maintain even the global solution against deleterious mutations, explaining the non-monotonic relationship between effective population size and transcriptional error rate that was recently observed in experiments on E. coli, C. elegans and Buchnera aphidicola.
27

Differences in evolutionary accessibility determine which equally effective regulatory motif evolves to generate pulses

Kun Xiong et al.Dec 3, 2020
ABSTRACT Transcriptional regulatory networks (TRNs) are enriched for certain “motifs”. Motif usage is commonly interpreted in adaptationist terms, i.e. that the optimal motif evolves. But certain motifs can also evolve more easily than others. Here, we computationally evolved TRNs to produce a pulse of an effector protein. Two well-known motifs, type 1 incoherent feed-forward loops (I1FFLs) and negative feedback loops (NFBLs), evolved as the primary solutions. Which motif evolves more often depends on selection conditions, but under all conditions, either motif achieves similar performance. I1FFLs generally evolve more often than NFBLs, unless we select for a tall pulse. I1FFLs are more evolutionarily accessible early on, before the effector protein evolves high expression; when NFBLs subsequently evolve, they tend to do so from a conjugated I1FFL-NFBL genotype. In the empirical S. cerevisiae TRN, output genes of NFBLs had higher expression levels than those of I1FFLs. These results suggest that evolutionary accessibility, and not relative functionality, shapes which motifs evolve in TRNs, and does so as a function of the expression levels of particular genes.