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Thomas Partridge
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HLA binding of self-peptides is biased towards proteins with specific molecular functions

В. Карнаухов et al.Feb 17, 2021
Abstract Human leukocyte antigen (HLA) is highly polymorphic and plays a key role in guiding adaptive immune responses by presenting foreign and self peptides to T cells. Each HLA variant selects a minor fraction of peptides that match a certain motif required for optimal interaction with the peptide-binding groove. These restriction rules define the landscape of peptides presented to T cells. Given these limitations, one might suggest that the choice of peptides presented by HLA is non-random and there is preferential presentation of an array of peptides that is optimal for distinguishing self and foreign proteins. In this study we explore these preferences with a comparative analysis of self peptides enriched and depleted in HLA ligands. We show that HLAs exhibit preferences towards presenting peptides from certain proteins while disfavoring others with specific functions, and highlight differences between various HLA genes and alleles in those preferences. We link those differences to HLA anchor residue propensities and amino acid composition of preferentially presented proteins. The set of proteins that peptides presented by a given HLA are most likely to be derived from can be used to distinguish between class I and class II HLAs and HLA alleles. Our observations can be extrapolated to explain the protective effect of certain HLA alleles in infectious diseases, and we hypothesize that they can also explain susceptibility to certain autoimmune diseases and cancers. We demonstrate that these differences lead to differential presentation of HIV, influenza virus, SARS-CoV-1 and SARS-CoV-2 proteins by various HLA alleles. Finally, we show that the reported self peptidome preferences of distinct HLA variants can be compensated by combinations of HLA-A/HLA-B and HLA-A/HLA-C alleles in frequent haplotypes.
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Deep analysis of the USP18-dependent ISGylome and proteome unveils important roles for USP18 in tumour cell antigenicity and radiosensitivity

Adán Pinto-Fernández et al.Mar 31, 2020
The deubiquitylating enzyme USP18 is a major negative regulator of the interferon (IFN) signalling cascade. IFN pathways contribute to resistance to conventional chemotherapy, radiotherapy, and immunotherapy and are often deregulated in cancer. USP18 is the predominant human protease that cleaves interferon-stimulated gene ISG15, a ubiquitin-like protein tightly regulated in the context of innate immunity, from its modified substrate proteins in vivo. In this study, using advanced proteomic techniques, we have expanded the USP18-dependent ISGylome and proteome in a chronic myeloid leukaemia (CML)-derived cell line (HAP1) treated with type I IFN. Novel ISGylation targets were characterised that modulate the sensing of innate ligands, antigen presentation and secretion of cytokines. Consequently, CML USP18-deficient cells are more antigenic, driving increased activation of cytotoxic T lymphocytes (CTLs) and are more susceptible to irradiation. Our results suggest USP18 as a pharmacological target in cancer immunotherapy and radiotherapy.### Competing Interest StatementThe authors have declared no competing interest.
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Elucidating the signatures of proteasome-catalysed peptide splicing

Wayne Paes et al.Apr 5, 2020
Proteasomes catalyse the degradation of endogenous proteins into oligopeptides, but can concurrently create spliced oligopeptides through ligation of previously non-contiguous peptide fragments. Recent studies have uncovered a formerly unappreciated role for proteasome-catalysed peptide splicing (PCPS) in the generation of non-genomically templated major histocompatibility complex class I (MHC-I)-bound cis-spliced peptides that can be targeted by CD8+ T cells in cancer and infection. However, the mechanisms defining PCPS reactions are poorly understood. Here, we experimentally define the biochemical constraints of proteasome-catalysed cis-splicing reactions by examination of in vitro proteasomal digests of a panel of viral- and self-derived polypeptide substrates using a tailored mass-spectrometry-based de novo sequencing workflow. We show that forward and reverse PCPS reactions display unique splicing signatures, defined by preferential fusion of distinct amino acid residues with stringent peptide length distributions, suggesting sequence- and size-dependent accessibility of splice reactants for proteasomal substrate binding pockets. Our data provide the basis for a more informed mechanistic understanding of PCPS that will facilitate future prediction of spliced peptides from protein sequences.