Abstract Mechanical factors such as stress in the extracellular environment are known to affect phenotypic commitment of cells. However, the stress fields experienced by cells in tissues are multiaxial, and the ways that cells integrate this multiaxial information are largely unknown. Here, we report that the anisotropy of these stress fields is a critical factor triggering phenotypic transition in fibroblast cells, outweighing the previously reported role of stress amplitude. Using a combined experimental and computational approach, we discovered a self-reinforcing mechanism in which cellular protrusions interact with collagen fibers to develop tension anisotropy, which in turn stabilizes protrusions and amplifies their contractile forces. Disruption of this self-reinforcing process, either by reducing tension anisotropy or by inhibiting contractile protrusions, prevented phenotypic conversion of fibroblasts to contractile myofibroblasts.

Abstract While it is well-known that mechanical signals can either promote or disrupt intervertebral disc (IVD) homeostasis, the molecular mechanisms for transducing mechanical stimuli are not fully understood. The transient receptor potential vanilloid 4 (TRPV4) ion channel activated in isolated IVD cells initiates extracellular matrix (ECM) gene expression, while TRPV4 ablation reduces cytokine production in response to circumferential stretching. However, the role of TRPV4 on ECM maintenance during tissue-level mechanical loading remains unknown. Using an organ culture model, we modulated TRPV4 function over both short-(hours) and long-term (days) and evaluated IVDs’ response. Activating TRPV4 with the agonist GSK101 resulted in a Ca 2+ flux propagating across the cells within the IVD. NF-κB signaling in the IVD peaked at 6 hours following TRPV4 activation that subsequently resulted in higher IL-6 production at 7 days. These cellular responses were concomitant with the accumulation of glycosaminoglycans and increased hydration in the nucleus pulposus that culminated in higher stiffness of the IVD. Sustained compressive loading of the IVD resulted in elevated NF-κB activity, IL-6 and VEGF-A production, and degenerative changes to the ECM. TRPV4 inhibition using GSK205 during loading mitigated the changes in inflammatory cytokines, protected against IVD degeneration, and but could not prevent ECM disorganization due to mechanical damage in the annulus fibrosus. These results indicate TRPV4 plays an important role in both short-and long-term adaptations of the IVD to mechanical loading. The modulation of TRPV4 may be a possible therapeutic for preventing load-induced IVD degeneration.